Кастрация самок

Шовный материал и способы его стерилизации

В настоящее время классификации шовного материала учитывают в основном два признака: способность к биодеструкции; структуру нити.

По способности к биодеструкции различают: рассасывающееся материалы (кетгут, коллаген, окцелон, кацелон, викрил, дексон и др.);и нерасссасывающие материалы (шелк, капрон, лавсан, нейлон, пролен, полипролен и др.).

По структуре нити различают:

мононuть - представляет собой однородную структуру с гладкой поверхностью;

полинumь - в сечении состоит из множества нитей (крученые, плетеные, комплексные нити).

К современному шовному материалу предъявляют следующие требования: Биосовместимость - отсутствие токсического, аллергенного, тератогенного действия шовной нити на ткани организма. В идеале всякая реакция на шовный материал должна отсутствовать.

Биодеградация - способность шовного материала распадаться и выводиться из организма. Шовный материал должен удерживать ткани до момента образования рубца, а затем становиться ненужным. При этом скорость биодеградации не должна превышать темп образования рубца, кроме того, шовный материал должен быть атравматичным.

Для наложения хирургических швов также используют льняные и хлопчатобумажные нитки.

Стерилизация шелка. Нити шелка выпускают в бабинах (нестерильных) или в ампулах (стерильных). Намотанный на стеклянные катушки или на стекла с отшлифованными краями шелк кипятят в дистиллированной воде 30-40 мин. Хранят в 96% -ном спирте либо в жидкости Никифорова.

Стерилизуют шелк и в растворах.

Способ Садовского. Мотки шелка помещают на 15 мин в 0,5%-ный раствор нашатырного спирта, а после этого на 15 мин в 2%-ный раствор формалина на 70%-ном спирте.

Способ Тура. Шелк помещают на 24-48 ч в 1 %-ный спиртовой раствор йода. Хранят в этом же растворе. Стерилизация хлопчатобумажных и льняных ниток. Эти нитки менее прочные, чем шелковые. Они обычно используются для закрытия дефектов кожи у мелких животных, на стенку кишечника (первый этаж), брюшину. Используют нитки № 10-20. Стерилизуют их по способу Садовского или погружают на 24 ч в 4%-ный раствор формалина.

Стерилизация кетгута. Кетгут изготавливается из подслизистого и частично мышечного слоев кишечника мелкого рогатого скота, поэтому требует особой тщательной обработки. В зависимости от калибра он рассасывается в тканях животного организма от 7 до 30 дней.

Стерилизация его с применением высокой температуры исключается. Применяется он в основном для погруженных швов. Выпускают его в мотках, требующих стерилизации, или стерильным - в запаянных ампулах.

Способ Губарева. Намотанный рыхло кетгут на катушках обезжиривают в течение 12-24 ч в эфире или бензине и стерилизуют в спиртовом растворе йода (1 г йода, 2 г калия йодида, 100 г 95%-ного этилового спирта) в течение 14 дней, который заменяют свежим через 7 дней.

Способ Покатило. Без предварительного обезжиривания кетгут на З сут. погружают в 4%-ный водный раствор формалина.

Способ Садовского-Котылева. Кетгут помещают на ЗО мин в 0,5%-ный раствор нашатырного спирта, затем переносят на 30 мин в 2%-ный раствор формалина на 65% -ном спирте, в котором хранят до употребления.

Способ Чубаря. Кетгут погружают на 3 сут. в жидкость, состоящую из спирта-ректификата 70%-ного, 200,0; глицерина - 5,0; настойки йода - 8,0 и йодистого калия - 6,0. В этой жидкости кетгут хранят длительное время.

Стерилизация синтетических ниток. Этот материал стерилизуют кипячением в дистиллированной воде в течение 20 мин. Металлическая проволока и скобки, а также штифты для соединения костей стерилизуют кипячением, обычно вместе с инструментами.

Стерилизация перевязочного материала

Стерилизация автоклавированием. Перевязочный материал (бинты, салфетки, лонгеты, компрессы, тампоны и др.) и хирургическое белье (xалаты, простыни, полотенца, колпачки) стерилизуют в автоклавах под давлением. Иногда туда помещают фарфоровую и стеклянную посуду, эмалированные тазики, растворы и др. Перед автоклавированием материал и белье неплотно укладывают в биксы. Перед помещением биксов в автоклав открывают боковые отверстия, плотно закрывают крышкой. Если биксов нет, то предметы хирургического обихода помещают в холщовые мешки или пакеты. Давление 0,5 атмосфер соответствует температуре l15 гр. с; 1 атм - 120; 2 атм - 134гр. с.

Перед пользованием автоклавом закрывают спусковой кран водопаровой камеры, открывают крышку автоклава, наливают через воронку воду до 2/3 уровня водомерного стекла, плотно закрывают крышку и тщательно завинчивают болты, после проверки герметичности включают источник нагрева и в течение 15-20 мин выпускают пар; закрывают кран и поднимают давление до необходимого для стерилизации уровня. Контроль стерилизации проводят путем помещения в бикс веществ, температура плавления которых выше 100гр. С. После окончания стерилизации автоклав отключают, медленно открывают спусковой кран, постепенно выпускают пар, снижая давление, открывают крышку автоклава, извлекают биксы и сразу закрывают в них отверстия, закрывают крышку автоклава.

Стерилизацию текущим паром производят в специальном стерилизаторе Коха, а при его отсутствии - в ведре или кастрюле с крышкой. В них наливают воду на 1/3 высоты. Начало стерилизации считается с момента выхода пара, температура поднимается до 100гр. С, продолжительность не менее 30 мин. При стерилизации утюжением температуру доводят до 100гр. С, продолжительность не менее 30 мин.

При стерилизации утюжением температуру доводят до 150гр. С. Перед стерилизацией простыни, марли, салфетки увлажняют водой и проглаживают со скоростью не более 50 см в минуту, проводя по одному и тому же месту 2-3 раза с обеих сторон. Проутюженный материал сворачивают при помощи стерильных пинцетов и укладывают в стерильный бикс или оставляют завернутым в простыню.

Подготовка животного и хирурга к операции:

Перед операцией у животного проводят клинические исследования, измеряют температуру тела, дыхание, частоту пульса, назначают голодную диету не более чем на 12 ч. Перед операцией животных выгуливают с целью освобождения толстого отдела кишечника, проводят чистку или частичное обезболивание.

Подготовка операционного поля.

Подготовку поля операции проводят в четыре этапа: механическая очистка; обезжиривание; обработка антисептиком, изоляция поля операции.

Механическая очистка включает в себя мытье с мылом (лучше хозяйственным), удаление волосяного покрова бритьем, выстриганием или выщипываньем шерсти у кошек. При этом величина подготавливаемого поля должна быть достаточной для обеспечения стерильных условий операции. Предпочтение отдают сбриванию, поскольку асептизация при этом способе более тщательная.

Обезжиривание операционного поля проводят стерильным марлевым тампоном, пропитанным О,5%-ным раствором нашатырного спирта или бензином в течение 1-2 мин. Обезжиренное поле операции обрабатывают антисептиком, по способу Фuлончuкова -Гроссиха. Сущность его заключается в том, что обезжиренное поле "дубят" и асептизируют 5%-ным раствором йода сначала после механической очистки, а затем непосредственно перед разрезом или после инфильтрационной анестезии. При этом интервал между обработками должен быть не менее 5 мин.

Обработку операционного поля антисептиком начинают от центра (места разреза или прокола) к периферии.

Изоляцию поля операции проводят с помощью стерильных простынь или клеенок, которые прикрепляют одна к другой специальными клеммами или цапками.

Подготовка рук перед операцией.

В процессе операции руки хирурга непосредственно соприкасаются с раной. Известно, что кожа рук, как и всякая другая поверхность тела, содержит множество микробов значительная часть которых относится к числу патогенных, поэтому подготовка рук перед операцией имеет особо важное значение. Ногти должны быть коротко подстрижены. Обработка рук состоит из трех этапов: а) механическая очистка; б) химическая дезинфекция; в) дубление кожи. Некоторые антисептические вещества нередко совмещают в себе бактерицидные и дубящие свойства (спиртовой раствор йода, раствор бриллиантовой зелени и др.), представляя таким образом бактерицидный дубитель или дубящий антисептик. Обработку рук ведут от кончиков пальцев и далее до локтей. Для механической обработки рук необходимо иметь щетки из растительного материала (листьев агавы, пальмы, сабура), конского волоса, синтетические, а также мыло, теплую воду.

Щетки из конского волоса обрабатывают антисептическими веществами. При выборе того или иного способа обработки рук следует всегда иметь в виду, что абсолютно стерильными руки быть не могут, они приобретают лишь относительную стерильность в течение определенного времени.

Применяемые химические вещества обладают бактерицидными свойствами, воздействуют на микробы, находящиеся на поверхности кожи, а дубящие приводят к закрытию выводных протоков потовых и сальных желез и фиксируют в них микроорганизмы.

Наиболее доступными и простыми по применению являются способ Альфельда. После тщательной механической очистки в теплой воде с мылом и щеткой руки моют в течение 3 мин. Если руки не вытирают полотенцем, то обрабатывают 96%-ным спиртом, если вытирают - 70%-ным. Когда кожа высохнет, подногтевые пространства смазывают 5%-ным спиртовым раствором йода. Это обеспечивают стерильность кожи рук на протяжении 20-30 мин. Ни один из способов обработки рук не доводит их до состояния абсолютной стерильности, поэтому перчатки являются единственным средством, с помощью которого обеспечивается стерильность. Это особенно необходимо при проведении операций по поводу гнойно-гнилостных процессов, а также при проведении полостных операций у мелких животных. Так как целость перчаток нельзя гарантировать, то производим дополнительную по способу описанному выше, чтобы не допустить переноса на рану "перчаточного сока", состоящего из пота, слущивающегося эпителия и бактерий. Стерилизуют перчатки кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин.

9. Обезболивание: комбинирование применение наркотических веществ с препаратами других групп

Наркоз сопровождается глубокими изменениями в состоянии животного, которые иногда бывают настолько существенными, что могут вызвать тяже тяжелые осложнения или даже смерть животного. Поэтому одним из важнейших методов современного наркоза является преднаркотическая фармакологическая подготовка животного - премедикация.

Премедикация позволяет:

-облегчить техническое осуществление наркоза и его течение (устраняется фаза двигательного возбуждения),

- предупредить возможные побочные явления связанные с наркозом и хирургическим вмешательством (уменьшении секреции бронхиальных желез, нарушение гемодинамики и т.д.,

- уменьшить или устранить опасные вегетативные рефлексы.

В процессе подготовки животного к операции, а также во время наркоза и при выходе из него применяют успокаивающие, холинолитические, анальгетические, сердечно-сосудистые и другие фармакологические вещества. Оказывая свое действие они позволяют не применять больших доз и концентраций наркотических веществ и способствуют сохранению функций организма на наиболее физиологическом уровне.

В ветеринарной практике для премедикации относительно широко пользуются так называемыми литическими смесями, содержащими нейролептические вещества в сочетании с анальгетиками, антигистаминными и другими нейротропными препаратами.

Состав литических смесей, дозы отдельных ингредиентов, способы применения могут быть различными в зависимости от вида и состояния животного. Чаще применяют литические смеси следующего состава:

1)аминазин 2,5%- 1-2 мл, дипразин 20,5% - 2мл, промедол 2%-1мл;

2)аминазин 2,5% - 2 мл, этизин 0,5% - 5мл, промедол 2% - 5 мл;

3)аминазин 2,5% - 2 мл, димедрол 2% - 2мл, промедол 2% - 2мл;

Данную смесь вводят внутримышечно или внутривенно за 10 - 20 минут до наркоза.

Широкое распространение получили также атропин и атропиноподобные препараты, предупреждающие рефлексы на сердце и дыхание, уменьшающие секрецию слюнных и бронхиальных желез.

Примерная схема наркоза для кошек: за 15-20 минут до наркоза подкожно или внутримышечно инъецируют 0,5-1 мл 0,1% раствора атропина; затем вводят подкожно или внутримышечно 2,5% раствор аминазина в дозе 0,1-0,2 мл или ромпун 0,15 мл/кг массы животного; при успокоении вводят неингаляционные наркотики, а в ходе операции желательно применять ингаляционные наркотики.

В связи с трудностями приобретения ветеринарными специaлиcтами анальгетических средств наркотического действия (промедол, морфин и др.) наибольшее распространение получила схема сочетанного применения кетамина (внутримышечно 5­10 мг/кг массы животного) и рометара (внутримышечно 1­3 мг/кг массы животного), позволяющая получить достаточную степень миорелаксации и анальгезии. При необходимости продления наркоза животным добавочно вводят половинные дозы указанных препаратов.

Сочетание и дозы препаратов, используемые при комбинированном наркозе для кошек.

Количество используемых препаратов, их вариабельность, дозировка изменяется и зависит от следующих факторов: тяжести состояния пациента; возраста; объема хирургического вмешательства; длительности анестезии.

10. Техника проведения операции

Подготовка операционного поля осуществляется по общепринятой методике. Фиксируют животное в спинном положении. Операцию проводят под общим наркозом или при сочетанном применении нейролептиков и местной инфильтрационной анестезии. До начала операции катетеризацией освобождают мочевой пузырь.

Лапаротомию брюшной стенки производят по белой линии живота.

Овариэктомия по белой линии живота: Схема наложения лигатур при кастрации кошки.

Разрез длиной 5-6 см делают по белой линии живота, отступив на 1-1,5 см каудально от пупка. У кошек разрез должен проходить на 1-2 см впереди лонного сращения. Вскрывают все слои белой линии. После вскрытия брюшной полости в раневое отверстие вводят два пальца (указательный и средний) и в дорсальной части брюшной стенки отыскивают рог матки (он отличается от кишки меньшим диаметром и большей плотностью стенок) или яичник. Последний выводят из полости наружу в рану. Иглой Дешана с длинной лигатурой проходят сквозь маточную связку, брыжейку и сосуды. Затем лигатуру разрезают на две нити и перевязывают спереди и сзади яичника. Яичник отсекают ножницами, а культю обрабатывают спиртовым раствором йода.

Вместо лигатур можно делать торзирование яичников. Для этого на связку яичника вместе с бахромкой накладывают гемостатический пинцет. Под него подводят второй пинцет и путем скручивания удаляют яичник. Другой яичник находят пальцами в глубине брюшной полости или проходят пальцами от конца рога матки к ее бифуркации, а затем по другому рогу к яичнику, который удаляют любым из вышеописанных способов. После ампутации яичников рога матки погружают в брюшную полость и вводят в нее антимикробные вещества (антибиотики, сульфаниламидные препараты и др.). На ткани белой линии накладывают непрерывный шов из кетгута или шелка, а на кожу - прерывистый узловатый шов из шелка. Кожные швы снимают на 8-10 день. В первый день после операции животному создают покой. Кормление обычное.

11. Возможные ослождения, их придупреждение и устранение

Осложнениями при наркозе являются рвота, остановка дыхания, коллапс. Рвоту предупреждают преднаркозной голодной диетой. Если рвота наступила, голове придают более низкое положение для освобождения от рвотных масс и очищают ротовую полость тампонами. Остановка дыхания может быть рефлекторной и вследствие интоксикации при передозировке наркотиков. При остановке дыхания наркоз прекращают, животное освобождают от фиксационных ремней, подкожно или внутривенно инъецируют лобелин, кофеин и немедленно приступают к искусственному дыханию. Для этого вытягивают из ротовой полости язык, грудные конечности отводят вперед, а потом приводят к груди, тем самым ритмично ее расширяя и сдавливая. Кроме того, можно отводить в сторону одну конечность, затем прижимать ее к телу и надавливать на боковую грудную стенку ладонью. Иногда бывает эффективным ритмичное похлопывание ладонью по грудной стенке. Если при операции была вскрыта брюшная полость, в нее вводят руку и массируют диафрагму, слегка ее надавливая и похлопывая пальцами. Коллапс чаще возникает у мелких животных и лошадей.

При коллапсе наблюдается внезапное ослабление сердечной деятельности, цианоз, расширение зрачков, слабый пульс и прекращение кровотечения из разрезанных сосудов. В этом случае немедленно прекрaщают наркоз, подкожно инъецируют кофеин и камфару или внутривенно адреналин. Легкими ритмичными ударами ладони о грудную клетку массируют сердце. Крайняя мера при коллапсе - интракардиальная инъекция адреналина в первые 5 мин после остановки сердцебиения.

Послекастрационные осложнения:

При правильном проведении операции и соответствующем содержании животных после кастрации осложнений, как правило, не бывает. Наибольшая угроза развития серьезных послеоперационных осложнений имеет место в первые 2-3 дня, т. е. к тому времени, пока не образуется надежная спайка краев брюшины. Послекастрационные осложнения могут быть самые разнообразные:

Кровотечение. При кастрации животных кровотечения могут быть как из сосудов брюшной стенки, так и из сосудов половых органов. Кровотечение из артерии яичника возникает при удалении яичников скальпелем, ножницами или непригодным эмаскулятором, а также когда лигатура, наложенная на связку и этот сосуд, была недостаточно сильно затянута.

Особенно опасные кровотечения возникают у самок, оперируемых во время эструса, когда матка и яичники сильно гиперемированы. Кровотечение может наступить во время операции или после ее завершения. Если кровотечение заметили еще до наложения швов на брюшную стенку, следует вывести соответствующий рог матки и наложить лигатуру на кровоточащий сосуд. Возникающее после операции кровотечение сопровождается малозаметными признаками, но может быть настолько интенсивным, что появляются симптомы острой анемии. Как правило, такое кровотечение останавливается самостоятельно, и кровь, вылившаяся в брюшную полость, полностью рассасывается.

Для предупреждения кровотечения при наложении лигатуры на связку и завязывании узла не следует сильно тянуть за концы лигатуры. Если первый узел затягивать при напряженной связке, лигатура во время завязывания второго узла может ослабнуть, в результате чего сосуды, сокращаясь после перевязки связки, выскальзывают из под лигатуры и начинают кровоточить. Поэтому при наложении лигатуры на связку и завязывании узла нельзя сильно тянуть за яичник. Если сильно натянуть яичник, при резком движении животного обрывается рог матки и разрывается срединная маточная артерия, начинается сильное кровотечение. Необходимо расширить рану брюшной стенки, вытянуть оборванный рог матки и на кровоточащий сосуд наложить лигатуру.

Во время вытягивания правого яичника при грубом натяжении брыжейки и матки возможен разрыв артерии матки, что сопровождается сильным кровотечением. Если это случилось, необходимо немедленно зажать гемостатическим пинцетом кровоточащий сосуд, а затем на него наложить лигатуру или перевязать брыжейку с рогом матки выше места разрыва сосуда. В крайнем случае необходимо ампутировать матку после перевя- зывания ее тела крепкой лигатуры и одновременно наложить по одной лигатуре на широкие связки матки.

Разрыв кишки и мочевого пузыря. Чаще всего встречается при кастрации свинок в результате перфорации брюшины хирургическими инструментами (ножницами, ручкой скальпеля, гемостатическим пинцетом и др.), особенно, когда кишечник или мочевой пузырь переполнены. Эту погрешность при операции обнаруживают сразу по запаху кишечных газов и выхождению из раны кишечника, мочеполовою пузыря их содержимого. В таких случаях необходимо сразу же захватить поврежденную часть кишки или мочевого пузыря и вытянуть из брюшной полости наружу, а затем наложить двухэтажный шов на рану кишечника. Стерильным тампоном с поверхности раны удаляют кровь и экскрет, промывают поврежденный участок кишки теплым раствором этакридина лактата (1: 1000) и вправляют ее в брюшную полость. Мочевой пузырь сначала освобождают от мочи, а затем на рану накладывают двухэтажный шов. После этого продолжают операцию. у этих животных в послеоперационный период, как правило, вторичных осложнений не бывает, однако необходимо для профилактики перитонита применять антибиотики.

Расхождение краев раны. Очень часто после операции диагностируют расхождение краев раны, особенно. Причина - развязывание узлов шва (особенно когда используют лигатуру из синтетических ниток), разрыв лигатур или разрыв краев раны швами, разлизывание шва самими животными. Если края раны разрываются швами на протяжении первых четырех суток, в этом случае для их соединения следует наложить дополнительные швы. При более позднем расхождении краев швы не накладывают и заживление раны идет по вторичному натяжению.

Выпадение внутренних органов. Наиболее часто выпадение внутренних органов (кишечник, мочевой пузырь, матка) встречается при лапаротомии по белой линии живота. Поэтому кастрация через область подвздоха имеет то преимущество, что при этом оперативном доступе меньше бывает пролапсов, грыж и эвентраций. Однако при этом методе отмечают отдельные случаи разнообразного смещения кишечника в сторону операционной раны, основной причиной этих осложнений является отсутствие швов на брюшине, особенно в тех случаях, когда она отслоена.

Выпадение кишечника под брюшину, где находится рыхлая клетчатка, бывает не только потому, что на брюшину не наложены швы, этому также способствует широкое отслоение брюшины во время лапаротомии, после чего здесь образуется "карман". Отслоение брюшины бывает при тупом методе перфорации брюшины, а также когда малоопытный хирург ошибочно принимает субперитонеальную рыхлую клетчатку за сальник и, не разрезая брюшину, начинает искать яичник.

Выпадение кишечника под кожу. Это осложнение возникает по трем причинам: 1) когда во время лапаротомии широко рассекают брюшные мышцы, а швы накладывают только на кожу; 2) когда швы наложены таким образом, что лигатуры во время напряжения брюшной стенки прорезают края раны, или когда развязываются узлы; 3) когда оперативный доступ делают в средней трети подвздоха, в так называемом апоневротическом треугольнике. Выпавшая под кожу петля кишки может в той или иной степени ущемляться или прирастать к коже. Иногда возникает небольшое ущемление в период значительного наполнения кишечника. В таких случаях появление резкой боли и отсутствие аппетита у животных имеют кратковременный и рецидивирующий характер. При сильном ущемлении выпавшей под кожу петли кишечника возникают стойкие, типичные симптомы кишечной непроходимости.

Выпадение рогов матки под брюшину. Такое смещение рогов матки возможно только тогда, когда после удаления яичников рог матки при впадении его в брюшную полость не смещается в последнюю, а в забрюшинное пространство. Этому способствует отслоение брюшины во время лапаротомии и отсутствие швов на брюшине. Если кишка, попавшая за брюшину, может (благодаря перистальтике ) самостоятельно вправиться в брюшную полость, то матка остается за брюшиной.

Профилактика вышеописанных осложнений:

Предупреждении тех погрешностей, которые допускаются при операции и способствуют этим осложнениям. Необходимо во время разреза брюшной

стенки избегать чрезмерного расслоения ее слоев, особенно брюшины. Для предупреждения отслоения брюшины необходимо избегать перфорации брюшины тупым способом. После удаления яичников необходимо расширить раневыми крючками рану, захватить гемостатическим пинцетом края разрезанной брюшины с обеих сторон раны, а затем указательным пальцем, введенным в брюшную полость, обвести вокруг всего края раны и тщательно проверить, не осталось ли в ней петли кишечника или рогов матки. После проверки на рану брюшины необходимо наложить шов. Лечебная помощь при выпадении кишечника или рогов матки в операционную рану может быть эффективной, если ее оказывают как можно раньше. Необходимо снять швы, раскрыть рану (разрушить фибринозную спайку) и после ревизии раневой полости вправить в брюшную полость выпавшую петлю кишки или рог матки с последующим наложением швов на брюшину и кожу. Если выпавшая в рану петля кишки будет ущемлена и развился некроз, необходимо провести резекцию этого участка. Грыжи возникают при лапаротомии по белой линии. Это объясняется значительным послаблением брюшной стенки при рассечении апоневрозов мышц брюшной стенки. Кроме того, эти ткани имеют слабую регенеративную способность. К причинам возникновения этих грыж относятся: неправильное наложение швов, когда их накладывают только на брюшину и кожу, не прошивая при этом белую линию; очень сильное стягивание погружных швов, что ведет к прорезыванию тканей или атрофии их в результате нарушения питания; нагноение погружных швов; отсутствие покоя у животных после операции; грыжи возникают чаще всего через 4-6 дней после операции, но встречаются случаи, когда они появляются позже (15-45 дней). Эти грыжи, как правило, не ущемленные, но они часто бывают невправимыми (фиксированными). С проявлением такой грыжи необходимо проводить грыжесечение. Время проведения операции следует определять в каждом конкретном случае, но если она появилась в первые дни после кастрации, то операцию делают после заживления раны. При ущемленных грыжах операцию выполняют немедленно.

12. Послеоперационный уход за животным

При правильном проведении операции, соблюдений всех правил асептики и антисептики и соответствующем содержании животного после кастрации, осложнений, как правило, не бывает. После операции ушитая кожная рана обрабатывается алюмиспреем. На животное надевается послеоперационная попонка, для сохранения швов и расхождения раны. В первый день после операции животному создают покой. В домашних условиях хозяева животного только раз в день осматривают шов, обрабатывать шов после нанесения алюмиспрея не нужно. Кожные швы снимаются на 8-10 день после операции.

Заключение

Данная операция - овариоэктомия у кошки, по белой линии живота, проведена правильно. Перед проведением операции я подготовилась: изучила теорию (элементы хирургической операции)

Прежде чем приступить к операции, я на практике наблюдала проведение данной операции с работающим в ветеринарном учереждении хирургом. Саму операцию я проделала под его руководством. Спустя 10 дней после операции, при осмотре хирургической раны, было обнаружено: наружные кожные швы у кошки сраслись, расхождение краев раны не наблюдается, края раны чистые, сухие, послекастрационных осложнений (выпадение внутренних органов, выпадение кишечника под кожу и т.д.)при осмотре не обнаружены .Животное чувствует себя хорошо. Температура в норме.

Литература

1. «Анатомия собаки и кошки» Н.В.Зеленевский, Г.А.Хонин, Санкт-Петербург 2004г.

2. Учебник «Оперативная хирургия с основами топографической анатомии»Под редакцией профессора Э.И.Веремея, профессора Б.С.Семенова. УП «Издательство» Урожай»»,2001г

3. «Хирургические операции у собак и кошек» Паршин А.А., Соболев В.А., Созинов В.А. ООО»Аквариум ЛТД», 1999, 2001 гг.

Размещено на Allbest.ru