Инсулиновая гипогликемия и метаболизм мозга
Определение и оценка принципиальной возможности и сроков восстановления основных биохимических параметров в мозге после купирования гипогликемической комы глюкозой. Исследование и анализ изменений метаболизма в мозге при неоднократной нейрогликопении.
Рубрика | Медицина |
Вид | автореферат |
Язык | русский |
Дата добавления | 25.12.2017 |
Размер файла | 94,9 K |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
Размещено на http://www.allbest.ru/
Размещено на http://www.allbest.ru/
Инсулиновая гипогликемия и метаболизм мозга
Автореферат
диссертации на соискание ученой степени доктора биологических наук
Общая характеристика работы
Актуальность темы. Изучение гипогликемии и ее последствий для организма занимает важное место среди проблем современной биологии и медицины.
Гипогликемия - широко распространенное состояние, возникающее при инсуломе поджелудочной железы, алкогольной интоксикации, заболеваниях печени и желудочно-кишечного тракта, но чаще всего инсулиновая гипогликемия сопровождает лечение сахарного диабета (Балаболкин, 2000; Cryer, 2004, 2006; Briscoe, Davis, 2006 и др.).
Эпизоды симптоматической гипогликемии наблюдаются у пациентов с инсулинодефицитом при интенсивной терапии около 10 раз в неделю, а тяжелой гипогликемии, сопровождающиеся временной утратой трудоспособности и госпитализацией - по крайней мере, один раз в год (Hepburn et al., 1993; Briscoe, Davis, 2006). По разным оценкам, от 2 до 7% смертей пациентов с сахарным диабетом первого типа связано с гипогликемией (Cryer, 2004; Дедов, 2005).
Предшествующие эпизоды гипогликемии уменьшают нейроэндокринный, симтоматический и когнитивный ответы при последующих гипогликемиях не только при дефиците эффектов инсулина (Segel et al., 2002), но и у недиабетических пациентов (Davis et al., 1997). Компенсаторные реакции при последующих гипогликемиях возникают при меньших концентрациях глюкозы, т.е. при более тяжелой гипогликемии. Это приводит к развитию бессимптомных гипогликемий. Механизмы ослабления симпатоадреналового ответа при последующих гипогликемиях неизвестны (Cryer, 2004, 2005; Briscoe, Davis, 2006). Поскольку мозг исключительно зависим от глюкозы и является первым органом, повреждающимся при гипогликемии (McAuley et al., 2001; Cryer et al., 2003; Zammitt, Frier, 2005), нарушения в нем обмена могут быть причиной уменьшения симпатоадреналового ответа при последующих гипогликемиях (Cryer, 2005).
Инсулин крови сам по себе не влияет на обмен мозга в целом (Ames, 2000; Brown, 2004). Действие больших доз инсулина, вызывающее определенную неврологическую симптоматику и повреждение нейронов, опосредовано гипогликемией (Siesjo, Agardh, 1983; McAuley et al., 2001; Cryer et al., 2003; Zammitt, Frier, 2005 и др.). Купирование гипогликемического ступора и комы глюкозой приводит к сравнительно быстрому восстановлению электрофизиологических и метаболических показателей. Исследования нарушений гомеостазиса Са2+ при нейрогликопении (Kristian et al., 1993) привели к представлению о эксайтотоксической природе повреждения нейронов при гипогликемии (Wieloch, 1985; Nehlig, 1997).
Несмотря на обилие информации о нарушениях метаболизма в мозге собственно при гипогликемии, изменения, возникающие в восстановительном периоде после купирования гипогликемической комы глюкозой и сроки нормализации связанных с гипогликемией нарушений обмена в головном мозге, до настоящего времени достаточно не исследованы. Повреждение нейронов может возникать не собственно в состоянии гипогликемии, а в восстановительном периоде. Кроме того, купирование гипогликемической комы в реальных условиях часто сопровождается гипергликемией, которая сама по себе может служить причиной нарушений обмена в нервной ткани (Siesjo et al. 1988; Suh et al., 2007). Именно значительные колебания уровня глюкозы в крови приводят к большему развитию окислительного стресса, повреждению эндотелия сосудов и увеличивают риск развития кардиоваскулярных расстройств у пациентов с сахарным диабетом (Ceriello et al., 2008).
Состояния нейрогликопении в ходе лечения больных сахарным диабетом и при других заболеваниях, осложнением которых является гипогликемия, встречаются неоднократно. Поэтому изменения обмена, возникающие в мозге при нейрогликопении, могут создавать метаболический фон, усугубляющий течение последующих эпизодов гипогликемии; возможна «суммация» неблагоприятных изменений.
Гипогликемия увеличивает риск развития последующих гипогликемий. Вопросы о том, как мозг адаптируется к возобновляющимся гипогликемиям и как это может приводить к увеличению повреждаемости нервных клеток, и каким образом возможные индуцированные гипогликемией изменения метаболизма в мозге могут способствовать защите его от повреждения, остаются открытыми (Sherwin, 2008).
Поскольку состояния гипогликемии широко распространены в клинической практике и способны приводить к необратимому повреждению нейронов, исследование патохимии гипогликемии также имеет непосредственное практическое значение в отношении разработки способов защиты нейронов от гипогликемического повреждения.
Систематического изучения изменений метаболизма мозга, которые могут быть следствием неоднократного воздействия на него гипогликемии, не проводилось.
Цель и задачи исследования.
Цель исследования состояла в определение механизмов инсулиновой гипогликемии в патохимии нервных расстройств, связанных с нейрогликопенией.
Основные задачи исследования:
1. Определение принципиальной возможности и сроков восстановления основных биохимических параметров в мозге после купирования гипогликемической комы глюкозой.
2. Выявление изменений метаболизма в мозге при неоднократной нейрогликопении, способствующих развитию повреждения нейронов и постгипогликемической энцефалопатии.
3. Выяснение взаимосвязи различных изменений обмена в мозге крыс, возникающих в результате неоднократно перенесенной гипогликемии.
Научная новизна
Впервые получены комплексные данные о состоянии энергетического обмена, метаболизма медиаторных аминокислот и процессов перекисного окисления липидов в различных отделах мозга животных при гипогликемии.
Установлено, что в отличие от однократной гипогликемии, неоднократно перенесенная гипогликемия вызывает серьезные нарушения энергетического обмена: снижение интенсивности гликолиза и гликогенолиза, активности ферментов энергетического обмена и нарушения распада гликогена в мозге.
Впервые выявлены стойкие нарушения метаболизма аминокислот в мозге животных, неоднократно перенесших гипогликемию: уменьшение активности глутаминазы и глутаматдекарбоксилазы в больших полушариях и уменьшение уровня ГАМК в стволе мозга, увеличение активности аденозинмонофосфатдезаминазы и уменьшение количества аспартата в больших полушариях мозга.
Впервые проведено комплексное исследование показателей, характеризующих интенсивность перекисного окисления липидов и систему антиоксидантной защиты в мозге при гипогликемии. Установлено, что неоднократно перенесенная гипогликемия приводит к снижению мощности антиоксидантных систем в мозге: уменьшению активности супероксиддисмутазы и продуцирующих восстановленную форму НАДФ дегидрогеназ.
Впервые проведена оценка общих показателей энергетического и азотистого обмена в организме экспериментальных животных при гиперинсулинизации. Установлено, что многократное введение высоких доз инсулина вызывает в организме в целом катаболические изменения, связанные с активацией конринсулярного аппарата.
Теоретическое и практическое значение работы. В процессе работы выявлены характерные для гипогликемии изменения метаболизма в головном мозге и в организме в целом. Проведена оценка фактора неоднократно возникающей гипогликемии в развитии нарушений обмена в головном мозге. В процессе исследования выявлены основные закономерности изменений показателей энергетического обмена, метаболизма нейромедиаторных аминокислот и перекисного окисления липидов в головном мозге при гипогликемии и оценено значение различных нарушений метаболизма в патохимии постгипогликемической энцефалопатии. Высказано предположение об увеличении потребления кетоновых тел мозгом крыс, неоднократно перенесших тяжелую гипогликемию. Установлено, что именно неоднократная нейрогликопения вызывает комплекс нарушений метаболизма, включающий в себя уменьшение гликолитической и митохондриальной энергопродукции, нарушения обмена гликогена, снижение активности ферментов синтеза ГАМК и активацию цикла пуриновых нуклеотидов в мозге, инициацию процессов перекисного окисления.
Полученные в работе данные необходимо учитывать при организации исследования нарушений обмена в головном мозге при различных патологических состояниях. Результаты работы могут служить основой для разработки профилактических и реабилитационных мероприятий в ходе лечения пациентов с сахарным диабетом, а также при других заболеваниях, сопровождающихся гипогликемией.
Положения, выносимые на защиту:
1. Изменения метаболизма, возникающие в мозге при однократной инсулиновой гипогликемии, обусловлены нейрогликопенией и имеют, в основном, обратимый характер.
2. Неоднократно перенесенная гипогликемия приводит к нарушению энергетического обмена, метаболизма нейротрансмиттерных аминокислот и активации процессов перекисного окисления липидов в мозге.
3. Большинство выявленных изменений энергетического, аминокислотного обмена и активация перекисного окисления липидов наблюдаются преимущественно в стволе мозга.
4. Общие нарушения метаболизма у животных, неоднократно перенесших инсулиновую гипогликемию, свидетельствуют об активации контринсулярного аппарата, увеличении катаболизма аминокислот и белков и сходны с таковыми при сахарном диабете.
Апробация работы. Основные положения диссертации доложены на конференции «Физиологические механизмы развития экстремальных состояний» (Санкт-Петербург, 1995), на Первом Российском конгрессе по патофизиологии с международным участием «Патофизиология органов и систем. Типовые патологические процессы» (Москва, 1996), на конференции «Состояние и перспективы современного лекарствоведения» (Ярославль, 1997), на конференции «Фундаментальные и прикладные аспекты современной биохимии», посвященной 100-летию кафедры биохимии СПбГМУ им. акад. И.П. Павлова (Санкт-Петербург, 1998), на 12-м Международном конгрессе по нейрохимии (Санкт-Петербург, 1998), на конференции «Актуальные вопросы общей и военной патологической анатомии», посвященной 140-летию кафедры патологической анатомии Военно-медицинской академии (Санкт-Петербург, 1999), на Всероссийской конференции «Проблемы медицинской энзимологии» (Москва, 2002), на Всероссийской конференции «Механизмы синаптической передачи» (Москва, 2004), на 5-й науч.-практ. конф. с международным участием «Достижения фундаментальных наук в решении актуальных проблем медицины» (Астрахань-Волгоград-Москва, 2006), на IV съезде Российского общества биохимиков и молекулярных биологов с международным участием (Новосибирск, 2008).
Публикации. По теме диссертации опубликовано 30 работ, включая 14 статей в журналах, рекомендованных ВАК.
Объем и структура диссертации. Диссертация состоит из общего введения, описания основных методов (Глава 1), трех глав результатов собственных исследований (Главы 2-4), каждая из которых включает литературную справку, описание использованных методических приемов, результаты, обсуждение и краткое резюме. Работа заключается семью общими выводами и списком литературы, состоящим из 664 литературных источника. Работа изложена на 285 страницах, содержит 27 рисунков и 18 таблиц.
Содержание работы
нейрогликопения мозг биохимический
Материалы и методы исследования
Опыты были поставлены на белых беспородных крысах массой 180-250 г. Животные содержались в обычных условиях вивария на стандартном пищевом рационе в условиях свободного доступа к корму и перед забоем были лишены пищи в течении 18-24 часов. Воду получали без ограничения во всех условиях эксперимента. Гипогликемическую кому вызывали внутримышечным введением инсулина (Actrapid MC, Actrapid HM, 40 ЕД/кг массы тела). Купирование гипогликемической комы производили путем внутрижелудочного введения 3.0 мл 40% раствора глюкозы.
При проведении опытов с неоднократной гипогликемией экспериментальные животные были разделены на 5 групп: 1 - интактные (контроль); 2 - крысы, находящиеся в состоянии гипогликемической комы; 3 - животные, обследованные через 48 часов после купирования 1-й гипогликемической комы; 4 - крысы, перенесшие 7-9 гипогликемических ком с интервалом в двое суток во время последней из серии ком; 5 - животные, перенесшие 7-9 гипогликемических ком через 48 часов после купирования последней комы.
Крыс забивали декапитацией под легким эфирным наркозом. Материалом для исследования служили большие полушария мозга и ствол мозга, сыворотка крови, печень, скелетная мышца.
Уровень субстратов энергетического и азотистого обмена в сыворотке крови определяли с использованием стандартных диагностических наборов.
Суммарную фракцию митохондрий и фракцию, содержащую растворимую часть цитоплазмы, получали общепринятыми методами дифференциального центрифугирования (Sottocasa, 1979; Прохорова, 1982). Все процедуры по выделению субклеточных фракций проводили при 0 - 4оС.
Активности НАД-зависимой изоцитратдегидрогеназы (КФ 1.1.1.41), НАДФ-зависимой изоцитратдегидрогеназы (КФ 1.1.1.42), НАДФ-зависимой малат-дегидрогеназы, («малик-энзим», КФ 1.1.1.40), глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы (КФ. 1.1.1.49), НАД-зависимой малатдегидрогеназы (КФ 1.1.1.37), глутамат-дегидрогеназы (КФ 1.4.1.3), аланинаминотрансферезы (КФ 2.6.1.2), аспартат-аминотрансферазы (КФ 2.6.1.1), количество пирувата, цитрата, -кетоглутарата, лактата, глутамата и гликогена определяли спектрофотометрически (Прохорова, 1982). Активность сукцинатдегидрогеназы (КФ 1.3.99.1), б-кетоглутарат-дегидрогеназы (КФ 1.2.4.2), пируватдегидрогеназы (КФ 1.2.4.1) и НАДН-дегидрогеназы (КФ 1.6.99.3) определяли с использованием 2,6 - дихлорфенолиндофенола в качестве акцептора электронов (Кривченкова, 1977). Интенсивность гликолиза и гликогенолиза оценивали по накоплению лактата в среде инкубации (Панин и соавт. 1982), активность АТФаз исследовали по скорости образования неорганического фосфата (Филиппов, 1991).
Определение количества аминокислот и активности ГАМК - аминотрансферазы (КФ 2. 6. 1. 19) и глутаматдекарбоксилазы (КФ 4.1.1.15) проводили с использованием тонкослойной хроматографии (Розанов, 1980). Активности глутаминазы (КФ 3.5.1.2) и аденозинмонофосфатдезаминазы (КФ 3.5.4.6) оценивали по накоплению аммиака (Лебедева и соавт., 1981). Активность моноаминооксидазы (КФ 1.4.3.4) определяли по накоплению аммиака, используя в качестве субстратов серотонин креатининсульфат, тирамин гидрохлорид, дофамин гидрохлорид и глюкозамин (Горошинская и соавт., 1989).
Скорость накопления малонового диальдегида оценивали по реакции с тиобарбитуровой кислотой, уровень диеновых коньюгатов - спектрофото-метрически (Никушкин и соавт., 1989). Активность супероксиддисмутазы (КФ 1.15.1.11) исследовали по торможению восстановления нитросинего тетразолия (Гуревич и соавт., 1990). Активности нейтральных и кислых протеаз определяли при рН соответственно 7.6 и 3.2 по накоплению тирозина (Мурти и соавт., 1985). Содержание белка определяли методом Lowry.
Статистическую обработку полученных данных проводили с использованием t - критерия Стъюдента после вычисления средней арифметической ряда (М), среднего квадратичного отклонения () и средней ошибки средней ариф-метической (m). Также использовался непараметрический критерий Вилкоксона-Манна-Уитни. Достоверными считали те результаты, для которых P<0.05. Исходные числовые данные обработаны в пакете статистических программ «Biotest», «Statistica 5.5».
Результаты исследования и их обсуждение
1. Уровень субстратов и активность ферментов энергетического и азотистого метаболизма в мозге крыс при однократной гипогликемии и в ранние сроки восстановительного периода.
В состоянии гипогликемической комы уровень глюкозы в крови крыс составлял 1.0-1.5 ммоль/л, введение глюкозы коматозным животным приводит к увеличению содержания глюкозы в крови: через 5, 15 и 30 мин величина гликемии составляет соответственно 2.0-3.0 ммоль/л, 6.0-7.0 ммоль/л и 10.0-15.0 ммоль/л.
У животных в состоянии гипогликемической комы уровень исследованных субстратов энергетического обмена в мозге уменьшается. Через 30 мин после купирования комы глюкозой происходит полное восстановление исследованных показателей. Расчет отношения НАД/НАДН в мозге крыс в состоянии гипогликемической комы указывает на резкое уменьшение уровня восстановленности пиридиновых нуклеотидов и свидетельствует о достаточном снабжении кислородом мозга крыс в состоянии гипогликемической комы.
Изменений интенсивности гликолиза и гликогенолиза, активности лактатдегидрогеназы, митохондриальных окислительных ферментов в больших полушариях и в стволе мозга крыс в состоянии гипогликемической комы и через 30 мин после купирования ее глюкозой не выявлено.
В состоянии гипогликемической комы в исследованных отделах мозга животных количество глутамата, ГАМК и аланина уменьшается, наблюдается увеличение уровня аспартата. Через 30 мин после купирования комы глюкозой происходит полное восстановление уровня исследованных аминокислот. Изменений активности глутаматдекарбоксилазы, ГАМК-, аланин- и аспартат-аминотрансфераз в мозге животных в этих экспериментах не выявлено.
Сам факт полного восстановления субстратного обеспечения гликолиза и цикла Кребса, уровня аминокислот, нормализация содержания гликогена в мозге при купировании комы глюкозой свидетельствует о сохранности ферментных систем и их регуляции после перенесенной однократной гипогликемии.
Общий вывод состоит в том, что изменения уровня исследованных субстратов отражают изменения уровня глюкозы в притекающей к мозгу крови и полностью обратимы при купировании комы глюкозой; изменения активности ферментов в состоянии однократной гипогликемической комы и в ранние сроки восстановительного периода практически отсутствуют. Таким образом, однократная гипогликемия в первом приближении представляет собою полностью обратимое в отношении исследованных показателей метаболизма состояние.
2. Общие показатели энергетического и азотистого обмена у крыс при неоднократной гипогликемии.
Время впадения крыс в первую кому и во все последующие было практически одинаковым, менялось случайным образом для каждого экспериментального животного, не зависело от количества ранее перенесенных коматозных состояний и составляло 2-3 часа. Содержание глюкозы в крови у крыс в состоянии 1-й и 7-й гипогликемических ком было практически одинаковым (Табл.1). У крыс 4-й группы концентрация свободных жирных кислот в сыворотке крови увеличивалась, а уровень кетоновых тел не отличался от нормы. У животных остальных экспериментальных групп оба эти показателя были значительно снижены.
Содержание мочевины в сыворотке крови в состоянии 1-й гипогликемической комы оставалось нормальным, а через 48 часов после купирования уменьшалось. У крыс, перенесших серию гипогликемических ком, в состоянии последней комы уровень мочевины значительно повышен (на 63%, P<0.001). Концентрация мочевой кислоты в сыворотке уменьшалась у животных в состоянии первой гипогликемической комы и увеличивалась через 48 часов после купирования. У крыс 4-й группы показатель повышен по сравнению с нормой и оставался высоким через 48 часов после купирования последней комы.
Таблица 1. Содержание энергетических субстратов, продуктов азотистого обмена в крови и гликогена в органах крыс при гиперинсулинизации (M ± m)
Показатель |
Группы экспериментальных животных |
|||||
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
||
Глюкоза, ммоль/л |
5.37 ± 0.12 |
1.36 ± 0.14*** |
5.63 ± 0.17 |
1.76 ± 0.23*** |
5.47 ± 0.15 |
|
СЖК, мкмоль/л |
409 ± 15 |
235 ± 34*** |
125 ± 11*** |
501 ± 13*** |
245 ± 16*** |
|
Кетоновые тела, мг/л |
34.8 ± 1.6 |
18.6 ± 2.3*** |
13.1 ± 2.0*** |
36.9 ± 2.5 |
25.7 ± 1.0*** |
|
Мочевина, ммоль/л |
4.6 ± 0.8 |
4.6 ± 0.2 |
2.9 ± 0.3** |
7.5 ± 0.4*** |
4.4 ± 0.7 |
|
Мочевая кислота, мкмоль/л |
210 ± 4 |
168 ± 3** |
245 ± 5** |
244 ± 14* |
250 ± 10* |
|
Гликоген печени, мг/г |
25.9 ± 1.6 |
17.1 ± 1.8** |
49.3 ± 2.5*** |
26.7 ± 1.3 |
25.5 ± 1.7 |
|
Гликоген скелет-ных мышц, мг/г |
9.5 ± 0.6 |
5.6 ± 0.4*** |
14.7 ± 0.5*** |
11.2 ± 0.9 |
13.0 ± 1.9 |
Примечание. Здесь и в таблицах 2-8: M - среднее, m - ошибка среднего; статистически достоверные по сравнению с контролем изменения обозначены: * - P < 0.05, ** - P < 0.01, *** - P < 0.001. В каждой группе по 6-8 животных. СЖК - свободные жирные кислоты
Количество гликогена в печени и скелетной мышце крыс в состоянии первой гипогликемической комы было снижено, через 48 часов после купирования комы количество гликогена в тканях увеличивается. У крыс, перенесших серию ком, таких изменений не обнаружено. Вне зависимости от конкретных механизмов, эти результаты однозначно свидетельствуют о нарушении распада и синтеза гликогена в тканях животных, неоднократно перенесших инсулиновую гипогликемию.
Таблица 2. Интенсивность накопления лактата в печени крыс при гиперинсулинизации, нмоль/(мин · мг белка) (M ± m)
Субстрат |
Группы экспериментальных животных |
|||||
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
||
Глюкоза |
12.7 ± 1.2 |
12.3 ± 1.1 |
12.1 ± 1.4 |
19.0 ± 0.8** |
14.2 ± 1.4 |
|
Г6Ф |
23.2 ± 1.4 |
21.2 ± 1.8 |
24.6 ± 1.7 |
25.4 ± 2.0 |
27.8 ± 1.3 |
|
Гликоген |
17.3 ± 1.0 |
11.6 ± 1.1** |
18.1 ± 0.9 |
26.6 ± 0.6*** |
16.8 ± 2.1 |
Примечание. Г6Ф - глюкозо-6-фосфат
Скорость образования лактата в печени крыс в состоянии 1-ой комы при использовании в качестве субстратов глюкозы и глюкозо-6-фосфата не изменялась, а интенсивность гликогенолиза снижалась на 33% (P<0.01) (Табл.2). У животных 4-ой группы интенсивность накопления лактата при использовании глюкозы и гликогена в качестве субстратов увеличивалась в 1.5 раза (в обоих случаях P<0.01), изменений скорости накопления лактата при использовании в качестве субстрата глюкозо-6-фосфата не выявлено.
Таблица 3. Активность ферментов в печени крыс при гиперинсулинизации (M ± m)
Фермент |
Группы экспериментальных животных |
|||||
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
||
мкмоль / (ч · мг белка) |
||||||
АСТ |
5.9 ± 0.1 |
5.6 ± 0.3 |
6.2 ± 0.2 |
6.8 ± 0.1*** |
7.2 ± 0.2*** |
|
АЛТ |
8.4 ± 0.2 |
8.8 ± 0.3 |
8.1 ± 0.2 |
9.7 ± 0.1*** |
9.3 ± 0.3* |
|
нмоль / (ч · мг белка) |
||||||
ГЛТ |
171 ± 13 |
179 ± 6 |
84 ± 12*** |
203 ± 6* |
240 ± 15** |
|
АМФ-Д |
37.8 ± 1.8 |
36.1 ± 1.8 |
37.2 ± 5.2 |
35.5 ± 3.3 |
25.5 ± 2.2** |
|
мкмоль / (мин · мг белка) |
||||||
СДГ |
1.47 ± 0.06 |
1.51 ± 0.08 |
1.38 ± 0.21 |
2.17 ± 0.29* |
1.76 ± 0.18 |
|
ГДГ |
0.53 ± 0.02 |
0.51 ± 0.04 |
0.50 ± 0.03 |
0.66 ± 0.05* |
0.49 ± 0.04 |
|
нмоль / (мин · мг белка) |
||||||
ЛДГ |
573 ± 44 |
582 ± 50 |
644 ± 29 |
698 ± 18* |
587 ± 32 |
|
Г6Ф-ДГ |
14.3 ± 0.4 |
15.8 ± 0.7 |
18.1 ± 0.6*** |
38.1 ± 1.5*** |
42.9 ± 1.2*** |
|
ГР |
47.3 ± 0.8 |
50.5 ± 0.7* |
54.7 ± 1.0*** |
66.9 ± 2.3*** |
67.6 ± 1.5*** |
|
НАДФ-ИЦДГ |
89.3 ± 4.1 |
81.2 ± 3.8 |
85.8 ± 5.9 |
93.4 ± 4.7 |
95.2 ± 5.3 |
|
НАДФ-МДГ |
47.1 ± 2.3 |
57.0 ± 2.1** |
55.2 ± 1.9* |
98.5 ± 5.6*** |
117.7 ± 4.9*** |
Примечание. АСТ - аспартатаминотрансфераза, АЛТ - аланинаминотрансфераза, ГЛТ - глутаминаза, АМФ-Д - аденозинмонофосфатдезаминаза, СДГ - сукцинатдегидрогеназа, ГДГ - глутаматдегидрогеназа, ЛДГ - лактатдегидрогеназа, Г6Ф-ДГ - глюкозо-6-фосфат - дегидрогеназа, ГР - глутатионредуктаза, НАДФ-ИЦДГ и НАДФ-МДГ - никотинамидадениндинуклеотидфосфат-зависимые соответственно изоцитрат- и малатдегидрогеназы
У крыс, перенесших серию ком, в состоянии последней комы активности лактатдегидрогеназы, сукцинатдегидрогеназы и глутаматдегидрогеназы в печени оказались увеличенными соответственно на 22%, 48 и 24% (во всех случаях P<0.01) по сравнению с контролем (Табл.3). У животных в состоянии 1-ой гипогликемической комы в печени возрастала активность глутатионредуктазы и НАДФ-зависимой малатдегидрогеназы. Через 48 часов после купирования 1-ой комы повышалась активность глутатионредуктазы, глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы и НАДФ-зависимой малатдегидрогеназы соответственно на 16%, 28 и 17% (во всех случаях P<0.001). У животных 4-ой и 5-ой групп наблюдали еще более значительное увеличение активности этих ферментов.
У животных 4-ой и 5-ой групп обнаружено увеличение активности аминотрансфераз в печени на 11-22% (P<0.05) (Табл.3). Активность глутаминазы у крыс в состоянии 1-ой гипогликемической комы не отличалась от уровня контроля, а через 48 часов после купирования снижалась. У крыс 4-ой и 5-ой групп активность глутаминазы, напротив, увеличивалась. В печени и скелетной мышце крыс в состоянии 1-ой гипогликемической комы уменьшалась активность нейтральных протеаз, в скелетной мышце показатель оставался сниженным и через 48 часов после купирования комы (Табл.4). В состоянии комы у крыс, перенесших серию ком, обнаружено увеличение активности кислых протеаз в печени, изменения являются стойкими. В скелетной мышце активность кислых и нейтральных протеаз у крыс 5-ой группы также заметно повышена.
Таблица 4. Активность кислых (рН 3.2) и нейтральных (рН 7.6) протеаз в печени и скелетной мышце крыс при гиперинсулинизации, нмоль /(мин · г ткани) (M ± m)
Объект |
Про-теазы |
Группы экспериментальных животных |
|||||
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
|||
Печень |
pH 3.2 |
52.1 ± 3.0 |
51.7 ± 1.6 |
52.5 ± 1.2 |
73.8 ± 3.3*** |
62.3 ± 2.4* |
|
pH 7.6 |
19.7 ± 0.8 |
13.5 ± 1.5** |
18.3 ± 1.4 |
21.7 ± 2.7 |
20.8 ± 0.7 |
||
Мышца |
pH 3.2 |
6.68 ± 0.43 |
7.17 ± 0.47 |
7.31 ± 0.47 |
7.00 ± 0.19 |
7.88 ± 0.31* |
|
pH 7.6 |
18.0 ± 0.5 |
14.7 ± 0.9** |
13.5 ± 0.4*** |
19.1 ± 0.9 |
19.8 ± 0.5* |
Изменения большинства исследованных показателей в печени и крови у экспериментальных животных в состоянии 1-ой гипогликемической комы вызваны непосредственным действием инсулина (O`Brien et al., 2001; Belke et al., 2002). Этим обусловлено уменьшение гликогенолиза в печени (Gastaldelli et al., 2001). Снижение концентрации свободных жирных кислот и кетоновых тел в крови обусловлено ингибированием липолиза под действием инсулина (Timothy, 1996). Уменьшение концентрации конечных продуктов азотистого обмена в крови и активности протеаз в печени и скелетных мышцах у крыс 2-ой и 3-ей групп также связаны с эффектами инсулина и в целом отражают репрессию катаболизма аминокислот (Charlton, Nair, 1998).
Изменения метаболизма у животных, перенесших серию гипогликемических ком и находящихся в состоянии комы (4-ая группа), весьма значительны и связаны с активацией контринсулярного аппарата и увеличением уровней глюкагона, катехоламинов и глюкокортикоидов при гипогликемии (Bolli, Fanelli, 1999; Балаболкин, 2000). К таким изменениям относятся увеличение уровня свободных жирных кислот и мочевины в крови, сохранение нормального уровня кетоновых тел, повышение активности глутаминазы, глутаматдегидрогеназы и аминотрансфераз и в печени, поскольку глюкагон и глюкокортикоиды стимулируют липолиз в жировой ткани и глюконеогенез в печени (Timothy, 1996; Nissim et al., 1999). Инсулин не препятствует активации глюконеогенеза в печени, особенно при высокой концентрации свободных жирных кислот в крови (Staehr et al., 2003). Гормон ингибирует преимущественно гликогенолиз, а не глюконеогенез (Adkins et al., 2003) и инсулиновая гипогликемия может приводить к активации образования глюкозы (Edgerton et al., 2002). Значительное увеличение активности НАДФ-зависимых дегидрогеназ в печени крыс, перенесших серию гипогликемических ком, связано с действием инсулина (O`Brien, 2001).
3. Интенсивность гликолиза и гликогенолиза и активность окислительных ферментов в мозге крыс при неоднократной гипогликемии.
Количество гликогена в больших полушариях мозга и в стволе мозга у крыс в состоянии 1-ой гипогликемической комы уменьшалось соответственно на 55% и 45% (в обоих случаях (P<0.01) и не отличалось от уровня контроля у животных других групп.
У крыс, забитых в состоянии последней из серии гипогликемических ком, при использовании всех субстратов обнаружено уменьшение интенсивности дихотомического распада углеводов (Табл. 5). Наиболее выраженные изменения в исследованных отделах мозга наблюдаются при использовании в качестве субстрата глюкозо-6-фосфата (-62%, P<0.001).
Такие изменения могут быть связаны с уменьшением скорости фосфо-фруктокиназной реакции (Magen et al., 1995) и / или с повреждением дегидрогеназы 3-фосфоглицеринового альдегида в результате активации окислительного стресса (Ciolino, Levine, 1997; Miura et al., 1997). Отсутствие изменений уровня гликогена и уменьшение интенсивности гликогенолиза в мозге крыс, неоднократно перенесших гипогликемию, в состоянии последней комы, свидетельствует о нарушении утилизации полисахарида. Нарушение использования гликогена в мозге рассматривается как один из существенных патохимических маркеров в развитии энцефалопатий различного генеза (Magistretti, Pellerin, 1996; Brown, 2004).
Таблица 5. Интенсивность накопления лактата в головном мозге крыс при гиперинсулинизации, нмоль/(мин · мг белка) (M ± m)
Субстрат |
Группы экспериментальных животных |
|||||
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
||
Большие полушария мозга |
||||||
Глюкоза |
53.6 ± 1.1 |
55.1 ± 1.0 |
55.4 ± 1.2 |
40.0±2.1*** |
56.1 ± 1.1 |
|
Г6Ф |
66.1 ± 4.0 |
63.6 ± 2.1 |
64.9 ± 2.8 |
25.8±0.6*** |
65.8 ±2.5 |
|
Гликоген |
19.8 ± 2.1 |
20.1 ± 1.6 |
21.1 ± 1.7 |
10.3±2.0* |
18.7 ± 2.1 |
|
Ствол мозга |
||||||
Глюкоза |
57.6 ± 1.0 |
55.7 ± 1.1 |
55.1 ± 1.4 |
37.4±1.6*** |
57.4 ± 1.3 |
|
Г6Ф |
73.7 ± 5.5 |
67.4 ± 4.0 |
69.7 ± 3.4 |
28.3±2.6*** |
68.3 ± 3.1 |
|
Гликоген |
18.7 ± 1.5 |
21.3 ± 1.2 |
19.5 ± 0.9 |
11.4±0.8*** |
14.4 ± 0.9* |
Примечание. Г6Ф - глюкозо-6-фосфат
нейрогликопения мозг биохимический
Угнетение гликолитической энергопродукции имеет существенное значение в нарушении функций мозга (Lipton, 1991; Ames, 2000; Korf, Gramsbergen, 2007). Гликолитическая энергопродукция в астроцитах обеспечивает работу Na+-, K+-АТФазы и удаление К+ из внеклеточной жидкости, поддерживая, тем самым, мембранный потенциала покоя нейронов, обеспечивает Na+-зависимый захват глутамата астроцитами (Pellerin, Magistretti, 1994), а также включение глутамата в состав синаптических везикул (Ikemoto et al., 2003). Образованный астроцитами лактат используется нейронами в качестве энергетического субстрата (Ames, 2000; Brown, 2004). Продукция молочной кислоты астроцитами имеет значение в регуляции концентрации Н+ во внеклеточной жидкости; Н+ уменьшает сродство NMDA-рецепторов к аспартату и глутамату (Tombaugh, Sapolsky, 1993). Лактат препятствует развитию эксайтотоксических эффектов глутамата (Ros et al., 2001), способствует выживанию нейронов в отсутствии глюкозы (Zeevalk, Nicklas, 2000).
Полученные данные позволяют предполагать, что в качестве источника энергии используются неглюкозные субстраты, в частности кетоновые тела плазмы крови и кетоновые тела, образующиеся в мозге в ходе окисления аминокислот с разветвленным радикалом (валина, лейцина, изолейцина) (Honegger et al., 2002; Greene et al., 2003).
В ходе экспериментов не было обнаружено изменений активности лактатдегидрогеназы, пируватдегидрогеназы и сукцинатдегидрогеназы в мозге. В состоянии последней гипогликемической комы у крыс, перенесших серию ком, наблюдается снижение активности -кетоглутаратдегидрогеназы в мозге. У крыс 4-ой и 5-ой групп наблюдается уменьшение активности НАДН-дегидрогеназы в стволе мозга. Активность НАД-зависимой изоцитратдегидрогеназы у животных 5-ой группы в стволе мозга увеличена (Табл. 6).
Таблица 6. Активность ферментов нмоль / (мин · мг белка) в головном мозге крыс при гиперинсулинизации (M ± m)
Фермент |
Отдел мозга |
Группы экспериментальных животных |
|||||
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
|||
НАД- ИЦДГ |
БПМ СМ |
47.8±1.6 33.7±1.9 |
49.7±1.5 34.4±1.7 |
45.1±1.1 32.7±1.5 |
52.8±3.1 38.6±2.1 |
53.6±4.0 40.5±1.8* |
|
НАДН- ДГ |
БПМ СМ |
83.3±1.8 54.1±2.1 |
80.1±2.2 51.5±1.7 |
85.2±2.0 57.3±1.4 |
78.1±1.7 44.7±1.9** |
84.4±3.1 46.0±1.2** |
|
-КГЛ-ДГ |
БПМ СМ |
53.9±2.4 53.8±3.7 |
48.7±2.5 45.8±3.1 |
51.6±2.6 49.7±3.3 |
45.6±2.1* 42.5±3.0* |
48.6±2.2 45.1±3.4 |
|
НАД- МДГ надосадок |
БПМ СМ |
1246±40 1416±74 |
1053±39** 1141±37** |
1196±30 1351±55 |
1022±45** 1201±53* |
1219±47 1342±61 |
|
НАД-МДГ митохондр. |
БПМ СМ |
416±6 388±8 |
430±12 371±10 |
440±15 369±14 |
408±14 360±12 |
432±6 354±7* |
Наиболее вероятной причиной уменьшения активности -кетоглутарат-дегидрогеназы и НАДН-дегидрогеназы является их повреждение в ходе активации окислительного стресса (Lenaz et al., 1997; Kumar et al., 2003). Кроме того, -кетоглутаратдегидрогеназный комплекс способен генерировать (а при окислительном повреждении особенно) активные формы кислорода (Starkov et al., 2004). Уменьшение активности НАДН-дегидрогеназы и -кетоглутарат-дегидрогеназы в мозге животных, перенесших серию гипогликемических ком может приводить к уменьшению продукции и окисления восстановленной формы НАД и к нарушению продукции АТФ в нервной ткани. Увеличение активности НАД-зависимой изоцитратдегидрогеназы в стволе мозга у крыс 5-ой группы, по-видимому, связано с индукцией синтеза белка-фермента и свидетельствует об увеличении окисления кетоновых тел в мозге (Veech et al., 2001).
В больших полушариях и в стволе мозга активность Na+, K+-АТФазы была повышена у крыс, находящихся в состоянии гипогликемической комы (2-ая и 4-ая группы) в 1,5 раза (P<0.001) (Рис. 4). У крыс, перенесших серию гипогликемических ком, увеличение активности фермента наблюдается и через 48 часов после купирования последней комы.
Увеличение активности фермента при гипогликемии было найдено также и другими исследователями (Филиппов, 1991; Kaur, Arora, 1994). Нейрогликопения является фактором, приводящим к активации Na+, K+-АТФазы в мозге. Повышение активности фермента у животных, неоднократно перенесших гипогликемию, связано с увеличением синтеза белка-фермента. Гипогликемия приводит к увеличению продукции адренокортикотропного гормона и кортикостероидов (Bolli, Fanelli, 1999; Балаболкин, 2000), которые стимулируют синтез Na+, K+-АТФазы в мозге (Grillo et al., 1997). Увеличение активности Na+, K+-ATФазы также может быть вызвано обеспечением ее работы митохондриальным АТФ в условиях большего окисления кетоновых тел (Gribble et al., 2000; Gajewski et al., 2003).
В состоянии собственно нейрогликопении можно предполагать другие механизмы увеличения активности Na+, K+-ATФазы в мозге, а именно изменение скорости фосфорилирования-дефосфорилирования б-субъединиц (Therien, Blostein, 2000; Kimura et al., 2007), дополнительную «сборку» молекул фермента из «внутриклеточных запасов» (Clausen, 2003), и / или изменение экспрессии регуляторных субъединиц семейства FXYD (Bйguin et al., 2002; Dubyak, 2004).
5. Изменения уровня аминокислот и ферментов азотистого метаболизма в мозге крыс при неоднократной гипогликемии.
Направленность и выраженность изменений уровня исследованных аминокислот оказались практически одинаковыми у животных, подвергнутых однократной гипогликемии и у крыс, перенесших серию гипогликемических ком в состоянии последней гипогликемической комы (Рис. 5). У животных 5-ой группы наблюдается уменьшение уровня аспартата в больших полушариях мозга (-10%, P<0.05) и ГАМК в стволе мозга (-29%, P<0.05). У крыс, 4-ой и 5-ой групп в больших полушариях мозга обнаружено уменьшение активности глутаматдекарбоксилазы на 11-12% (в обоих случаях P<0.01) (Табл.7).
У крыс, находящихся в состоянии 1-ой гипогликемической комы наблюдается снижение активности глутаминазы в больших полушариях и в стволе мозга (Табл. 7), изменения сохраняются и через 48 часов после купирования комы. Аналогичные изменения обнаружены и в экспериментах с многократной гипогликемической комой. У животных 2-ой, 4-ой и 5-ой групп выявлено увеличение активности аденозинмонофосфатдезаминазы в мозге.
Уменьшение количества глутамата, аланина и ГАМК в мозге в состоянии гипогликемической комы является следствием снижения образования их из глюкозы и результатом использования этих аминокислот в качестве эндогенных субстратов окисления. Увеличение содержания аспартата обусловлено уменьшением уровня восстановленности клеточных редокс-систем и снижением гликолитического потока при нейрогликопении (Auer, Siesjo, 1993; Daikhin, Yudkoff, 1998).
Уменьшение количества аспартата в сочетании с увеличением активности аденозинмонофосфатдезаминазы в больших полушариях мозга крыс, перенесших гипогликемию неоднократно свидетельствует об активации непрямого дезаминирования аспартата в реакциях пуринового цикла, что неизбежно приводит к образованию свободного аммиака (Marynissen et al., 1992; Borza et al., 2003). Увеличение уровня аммиака в мозге оказывает разнообразные неблагоприятные воздействия на метаболизм, гемоциркуляцию и синаптическую передачу и способно в конечном итоге приводить к повреждению и гибели клеток (Butterworth, 2002; Rose et al., 2005, 2006). Уменьшение уровня аспартата в нервной ткани также может быть связано с увеличение окисления кетоновых тел мозгом (Yudkoff et al., 2001; Greene et al., 2003).
Таблица 7. Активность ферментов азотистого метаболизма в мозге крыс, неоднократно перенесших гипогликемию (M ± m)
Фермент |
Отдел мозга |
Группы экспериментальных животных |
|||||
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
|||
ГЛ-ДК |
БПМ |
14.3 ± 0.3 |
13.4 ± 0.4 |
14.4 ± 0.4 |
12.5 ±0.4** |
12.7 ±0.4** |
|
СМ |
16.4 ± 1.0 |
15.7 ±1.3 |
15.9 ± 1.0 |
15.4 ± 0.9 |
16.5 ± 1.2 |
||
ГЛТ |
БПМ |
73.3±0.8 |
65.6±2.0** |
67.1±1.3** |
45.1±3.3*** |
49.4±3.2*** |
|
СМ |
64.7±1.3 |
58.3±2.0* |
63.4±1.9 |
56.8±3.0* |
55.3±2.7* |
||
ГДГ |
БПМ |
267±18 |
273±15 |
275±15 |
251±13 |
265±11 |
|
СМ |
264±15 |
261±14 |
259±21 |
266±16 |
250±18 |
||
АМФ-Д Митохондрии |
БПМ |
32.5±1.6 |
36.7±1.8 |
29.9±1.7 |
43.1±2.5** |
39.6±1.9* |
|
СМ |
29.3±1.2 |
33.6±1.5* |
28.5±1.6 |
38.3±1.9** |
37.3±1.5** |
||
АМФ-ДНадосадок |
БПМ |
30.2±1.4 |
35.3±1.7* |
34.1±1.8 |
40.4±1.8*** |
39.4±2.2** |
|
СМ |
28.5±1.1 |
34.2±1.4** |
30.5±1.3 |
39.7±2.1*** |
41.3±2.5*** |
Увеличение активности аденозинмонофосфатдезаминазы может приводить к уменьшению общего пула адениловых нуклеотидов, к снижению энергообеспечения и нарушению межклеточных коммуникаций, обеспечиваемых нуклеотидами (Inoue et al., 2007). Образование и последующее окисление гипоксантина и ксантина в ксантиноксидазной реакции сопровождается продукцией супероксиданионрадикала (Desco et al., 2002) и тем самым способно стимулировать процессы перекисного окисления. Окислительный стресс, в свою очередь, приводит к увеличению активности аденозинмонофосфатдезаминазы путем окисления SH-групп в молекуле фермента (Tavazzi et al., 2001).
Причинами обнаруженного в наших исследованиях уменьшения активности глутаминазы и глутаматдекарбоксилазы могут быть значительные колебания уровня субстратов (глутамина, глутамата и аммиака) при гипогликемии и купировании гипогликемической комы (Rao, Murthy, 1993; Butterworth, 1998), а также повреждение ферментов в результате активации окислительного стресса. Указанные изменения могут относиться именно к ГАМК-ергическим нейронам, поскольку эти нейроны обладают высокой фосфатзависимой глутаминазной активностью (Hogstag et al., 1988). Независимо от конкретных механизмов, снижение активности глутаминазы и глутаматдекарбоксилазы может иметь значение в уменьшении потенциальных возможностей глутамат- и ГАМК-ергической передачи в ЦНС в результате перенесенной гипогликемии, так как основным источником глутамата и ГАМК, освобождаемых нервными окончаниями, является глутамин (Sonnewald et al., 1993; Honegger et al., 2002).
6. Перекисное окисление липидов и связанные с ним реакции в мозге крыс при инсулиновой гипогликемии.
У крыс в состоянии 1-ой гипогликемической комы изменений в накоплении малонового диальдегида в исследованных отделах мозга не выявлено. Активность супероксиддисмутазы снижалась в стволе мозга на 21% (P<0.001), активность глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы и митохондриальной НАДФ-зависимой изоцитратдегидрогеназы была снижена в больших полушариях и в стволе мозга (на 9-12%, P<0.05). У крыс 3-ей группы изменений исследованных показателей не выявлено. У животных, перенесших серию гипогликемических ком, через 48 часов после купирования последней комы в стволе мозга обнаружено увеличение образования малонового диальдегида.
У крыс, перенесших серию гипогликемических ком, наблюдалось уменьшение активности супероксиддисмутазы в больших полушариях мозга и в стволе мозга на 40-50% (P<0.05) (Табл.8). В обоих отделах мозга животных этой группы выявлено уменьшение активности НАДФ-зависимых дегидрогеназ, являющихся компонентами ферментативной антиоксидантной системы клеток.
В стволе мозга экспериментальных животных, перенесших серию гипогликемических ком, активность нейтральных протеаз увеличивается на 20% (P<0.001), а кислых протеаз на 28% (P<0.01).
Таблица 8. Уровень диеновых коньюгатов (Е232. 1000) /мг ткани, активность СОД (ЕД / мг белка), НАДФ-зависимых дегидрогеназ нмоль/(мин · мг белка) в мозге крыс, перенесших серию гипогликемических ком, через 48 часов после купирования последней комы (M m)
Показатель |
Отдел мозга |
Контроль |
Опыт |
|
ДК |
БПМ |
1.80 0.13 |
1.41 0.11* |
|
CМ |
2.55 0.05 |
1.57 0.12* |
||
СОД |
БПМ |
210 11 |
102 12 |
|
СМ |
220 12 |
135 23 |
||
Г6Ф-ДГ |
БПМ |
12.2 0.3 |
11.3 0.2 |
|
СМ |
17.0 0.4 |
17.2 0.5 |
||
ГР цитоплазматическая фракция |
БПМ |
11.0 0.2 |
9.7 0.3 |
|
СМ |
13.1 0.7 |
13.0 0.6 |
||
НАДФ-ИЦДГ цитоплазматическая фракция |
БПМСМ |
10.5 0.313.1 0.3 |
9.5 0.3*12.2 0.2* |
|
НАДФ-ИЦДГ митохондриальная фракция |
БПМ |
16.6 0.8 |
16.5 1.0 |
|
СМ |
14.3 1.8 |
9.0 0.5 |
||
НАДФ-МДГ, цитоплазматическая фракция |
БПМ |
6.8 0.4 |
6.4 0.3 |
|
СМ |
10.3 0.5 |
8.0 0.4* |
||
НАДФ-МДГ митохондриальная фракция |
БПМ |
33.6 2.0 |
31.8 1.6 |
|
СМ |
37.5 1.6 |
34.7 1.7 |
Примечание. ДК - диеновые коньюгаты, СОД - супероксиддисмутаза, Г6Ф-ДГ - глюкозо-6-фосфатдегидрогеназа, ГР - глутатионредуктаза, НАДФ-ИЦДГ и НАДФ-МДГ - соответственно никотинамидадениндинуклеотидфосфат-зависимые изоцитрат- и малат - дегидрогеназы
У крыс, находящихся в состоянии гипогликемической комы, наблюдается уменьшение активности моноаминооксидазы (МАО) в больших полушариях мозга при использовании в качестве субстрата тирамина. Активность фермента в стволе мозга уменьшалась при использовании в качестве субстратов серотонина, тирамина и дофамина, и имела тенденцию к увеличению при инкубации с глюкозамином (Рис. 7). На 2-е сутки после купирования 1-ой комы наблюдается уменьшение интенсивности образования аммиака при использовании в качестве субстратов МАО серотонина и тирамина. В то же время обнаружено увеличение моноаминооксидазной активности при использовании в качестве субстрата глюкозамина, в больших полушариях мозга в 2,2 раза, в стволе мозга в 2,7 раза.
У крыс, перенесших серию гипогликемических ком, на 2-е сутки после купирования последней комы в больших полушариях мозга уменьшается активность МАО при использовании в качестве субстрата тирамина; в стволе мозга снижается активность фермента при использовании в качестве субстрата серотонина, тирамина и дофамина (Рис.). У животных этой экспериментальной группы наблюдается увеличение образования аммиака при инкубации митохондриальных фракций, полученных из больших полушарий мозга и ствола мозга с глюкозамином соответственно в 2,6 и в 3,5 раза.
Активность МАО при использовании различных субстратов фермента в мозге крыс при гипогликемии. 2 - крысы, находящиеся в состоянии гипогликемической комы, 3 - через 12 час после купирования гипогликемической комы глюкозой, 4 - через 48 часов после купирования комы и 5 - животные, перенесшие 7- 9 гипогликемических ком с интервалом 2 дня на 2-е сутки после купирования последней комы
Увеличение скорости накопления малонового диальдегида свидетельствует об активации процессов перекисного окисления липидов в мозге крыс, неоднократно перенесших гипогликемию. Стимуляция перекисного окисления липидов при гипогликемии связана не только с дефицитом энергии, нарушениями кальциевого гомеостаза и относительной гипероксией, но и с нарушением системы антиоксидантной защиты. Уменьшение активности супероксиддисмутазы в мозге крыс при гипогликемии, следует рассматривать как неблагоприятный фактор, способный в конечном итоге приводить к повреждению клеток мозга, поскольку токсичность кислорода связана, прежде всего, с образованием супероксиданионрадикала (Lebovitz et al., 1996; Hinerfeld et al., 2004).
Выявленное в настоящем исследовании уменьшение активности НАДФ-зависимых дегидрогеназ у крыс, подвергнутых гипогликемии, также может быть связано с окислением сульфгидрильных групп белковой части молекул ферментов активными формами кислорода и азота (Halliwel, 1992; Gerlach et al, 1994). Увеличение активности протеаз также является результатом развития окислительного стресса, поскольку действие на геном продуктов перекисного окисления липидов приводит к индукции синтеза протеаз (Halliwel, 1992, 2006). Моноаминооксидаза обнаруживает высокую чувствительность к окислительному стрессу, которая выражается в снижении активности при использовании специфических субстратов и к расширению спектра относительной специфичности фермента (Горошинская и соавт., 1999). Уменьшение активности МАО, продемонстрированное в настоящем исследовании, может быть результатом окислительного стресса и окисления сульфгидрильных групп активного центра фермента (Sablin, Ramsay, 1988; Hubalek et al., 2003).
Заключение
В наших исследованиях не удалось выявить существенных изменений интенсивности гликолиза и активности ферментов цикла Кребса, активности ферментов азотистого метаболизма, показателей перекисного окисления и связанных с ним реакций в мозге крыс в состоянии однократной гипогликемической комы, в ранние сроки после купирования ее глюкозой и через 48 час после перенесенного воздействия. Восстановление субстратного обеспечения гликолиза и цикла Кребса и нормализация уровня аминокислот при купировании комы глюкозой свидетельствует о сохранности ферментных систем и их регуляции после перенесенной однократной гипогликемии.
Изменения большинства исследованных показателей в печени и крови у экспериментальных животных в состоянии 1-ой гипогликемической комы вызваны непосредственным действием инсулина. При многократном воздействии высоких доз инсулина метаболическая реакция на введение гормона обусловлена активацией контринсулярного аппарата в ответ на гипогликемию. Такая реакция проявляется в увеличении уровня свободных жирных кислот и сохранении высокого уровня кетоновых тел в крови, существенном повышении содержания мочевины в крови и активности глутаминазы, глутаматдегидрогеназы, аминотрансфераз в печени, увеличении активности протеаз в печени и скелетной мышце. Таким образом, неоднократно перенесенная гипогликемия представляет собою стрессорное воздействие и вызывает комплекс патохимических изменений, сходный с таковым при сахарном диабете.
У животных, неоднократно перенесших гипогликемию, в мозге выявлена активация процессов перекисного окисления и нарушения системы антиоксидантной защиты: увеличение уровня малонового диальдегида, снижение активности супероксиддисмутазы и глутатионредуктазы, а также ферментов продуцирующих восстановленную фор...
Подобные документы
Топографическая анатомия головного мозга: оболочки, желудочки мозга, границы долей, система кровоснабжения. Гистологическая классификация внутричерепных опухолей. Характеристика основных методик оперативного вмешательства на головном мозге при опухолях.
курсовая работа [6,2 M], добавлен 13.11.2011Классификация неврологических ком. Нарушение клеточного дыхания и обмена энергии в головном мозге. Окислительное фосфорилирование. Изменения физических свойств и структуры головного мозга и внутричерепных образований. Клинические критерии смерти мозга.
презентация [1,1 M], добавлен 29.09.2013Изучение радионуклидного томографического метода исследования внутренних органов человека и животного. Анализ распределения в организме активных соединений, меченых радиоизотопами. Описания методики оценки метаболизма глюкозы в сердце, легких и мозге.
реферат [21,3 K], добавлен 15.06.2011Потребление головным мозгом кислорода, глюкозы. Аэробное окисление глюкозы в головном мозге и механизмы его регуляции. Цикл трикарбоновых кислот и механизмы, контролирующие его скорость в мозге. Энергообеспечение специфических функций нервной ткани.
курсовая работа [1,1 M], добавлен 26.08.2009Исследование компенсаторных механизмов метаболического ацидоза. Анализ факторов гипоксии тканей. Клиническая картина и дифференциальная диагностика диабетической комы. Ликвидация инсулиновой недостаточности. Неотложная помощь при гипогликемической коме.
презентация [924,8 K], добавлен 31.03.2016Клиническая картина эпилепсии у мужчин. Образование эпилептогенного очага в мозге вследствие травм или воспалительных поражений мозга. Когнитивные нарушения при эпилепсии. Показатели когнитивной сферы в зависимости от формы эпилепсии и сроков лечения.
доклад [23,3 K], добавлен 07.07.2009Неустойчивость, пошатывание и неуверенность ребенка при ходьбе. Ограниченность движений в конечностях. Задержка психоречевого развития. Морфологические изменения в головном мозге. Факторы, детерминирующие структурно-функциональные изменения в мозге.
история болезни [32,0 K], добавлен 27.05.2016Сущностные характеристики нейрональной активности и исследование активности нейронов головного мозга. Анализ электроэнцефалографии, которая занимается оценкой биопотенциалов, возникающих при возбуждении мозговых клеток. Процесс магнитоэнцефалографии.
контрольная работа [296,9 K], добавлен 25.09.2011Продукты метаболизма пуриновых оснований. Нарушение метаболизма мочевой кислоты. Повышенный уровень содержания мочевой кислоты в крови. Потребление богатой пурином пищи как одна из основных причин гиперурикемии. Основные элементы возникновения подагры.
реферат [45,2 K], добавлен 24.04.2016Самый древний трактат, в котором упоминается эпилепсия. Изменения метаболизма в мозге больных эпилепсией, нарушения в проведении нервных импульсов. Классификация эпилептических синдромов. Основной вид приступов, определяющий клиническую картину синдрома.
реферат [26,2 K], добавлен 28.03.2014Виды коматозных состояний, их отличия, причины возникновения и методы оказания первой помощи. Деятельность головного мозга при патофизиологических комах, факторы, влияющие на его повреждение. Роль гипогликемии и гипергликемии в возникновении комы.
реферат [17,9 K], добавлен 12.09.2009Энцефалопатия в связи с декомпенсацией сахарного диабета. Этиология и лабораторные критерии диагостики диабетической и гиперосмолярной комы, принципы и нюансы их лечения. Цели терапии диабетического кетоацидоза. Клиническая картина гипогликемической комы.
реферат [19,9 K], добавлен 30.11.2009Роль клеточных органелл в энергетических процессах, нервной клетки. Обмен углеводов и особенности энергетического обеспечения мозга. Метаболизм липидов, белков и аминокислот. Роль воды в обеспечении функционирования. Церебральный энергетический обмен.
контрольная работа [48,5 K], добавлен 19.08.2015Причины диабетической (кетоацидотической) комы - состояния, развивающегося в результате недостатка инсулина в организме у больных сахарным диабетом. Начальные проявления его декомпенсации. Гомеостаз глюкозы у человека. Этиология и проявления гипогликемии.
контрольная работа [57,1 K], добавлен 20.05.2015Гипергликемические и гипогликемические комы. Интенсивная терапия при тиреотоксическом кризе, гипокальциемии. Симптомы, диагностика и лечение гипогликемической комы. Общие принципы неотложной и интенсивной терапии при гиперосмолярной неацидотической коме.
презентация [269,1 K], добавлен 14.04.2015Влияние дипривана на коронарную циркуляцию и метаболизм миокарда. Влияние на метаболизм мозга и мозговой кровоток. Анестезиологические функции дипривана. Оценка адекватности анестезии. Особенности анестезии диприваном и пробуждения после анестезии.
реферат [23,8 K], добавлен 08.09.2010Причины и факторы гипогликемии - снижения уровня глюкозы в крови. Признаки гипогликемической комы, стадии протекания клинической картины. Меры первой помощи и интенсивная терапия на стадии прекомы. Лекарственные средства для выведения больного из комы.
презентация [1,5 M], добавлен 18.10.2015Что такое сосудистая патология головного мозга, ее разновидности, хирургия. Инфузионно-трансфузионная терапия при неосложненных случаях. Общая анестезия при образованиях хиазмально-селлярной области, при операциях на позвоночнике и спинном мозге.
реферат [23,1 K], добавлен 27.10.2009Использование экспресс-тестов для оценки психического состояния нервной системы. Оценка функционального состояния ЦНС при различных степенях нарушения сознания. Клинические и инструментальные признаки. Диагностика диабетической и гипогликемической комы.
реферат [19,0 K], добавлен 21.09.2009Основные механизмы регуляции метаболических процессов. Контроль за биосинтезом фермента, гормональная регуляция метаболизма жирных кислот. Специфика расщепления гликогена. Взаимопревращение гликоген-фосфорилазы. Гормональная регуляция метаболизма белков.
реферат [13,9 K], добавлен 13.02.2011