Ветеринарная хирургия

Размещено на http://www.allbest.ru/

1. Понятие о хирургических операцииях

Цель - узнать историю развития ветеринарной хирургии, изучить классификацию и технику операции.

1.1 История развития ветеринарной хирургии

Зарождение искусства лечения животных, в том числе оказание им хирургической помощи, относится к доисторическому времени и связано с приручением животных. Имеются данные о том, что уже в неолите человек умел кастрировать животных. Последующие попытки врачевания животных получили развитие среди скотоводов, пастухов и охотников.

При оказании помощи в первую очередь требовалась совокупность механических приёмов, то есть действий руками. Отсюда впоследствии возникло наименование «хирургия» (греч. cheir -рука, ergon-действие).

Огромная роль в развитии советской ветеринарной хирургии (в том числе и оперативной) принадлежит профессору Л. С. Сапожникову--основателю самой крупной в СССР Казанской школы ветеринарных хирургов. Под влиянием научных идей Л.С. Сапожникова большой вклад в ветеринарную хирургию внесли: лауреат Сталинской премии профессор В.М. Оливков (автор двух учебников по общей и оперативной хирургии и нескольких монографий по важнейшим ее проблемам), профессор И.Д. Медведев (военно-полевой хирург, автор двух учебников и монографий по военно-полевой хирургии и физическим методам лечения), профессор И.Е. Пова-женко (автор нескольких монографий по заболеваниям холки и послекастра-ционным осложнениям и руководства по военно-полевой хирургии), профессор Э.И. Гауэнштейн (автор учебника общей и частной хирургии), профессор Н.А. Иванов (автор учебника по ветеринарной ортопедии), профессор А.Ю. Тарасевич (автор учебника по оперативной хирургии и других руководств) и другие.

Ветеринарная оперативная хирургия--наука о хирургических операциях, применяемых с целью лечения различных заболеваний животных и повышения продуктивности животноводства.

Оперативная хирургия с топографической анатомией входит в комплекс хирургических дисциплин: общей хирургии, частной хирургии, учения о глазных болезнях, ортопедии и военно-полевой хирургии. В этом комплексе она занимает особое место, так как связывает науки общебиологического цикла с клиническими, объединяя теорию и практику ветеринарной медицины, готовит студентов к практической деятельности врача, в первую очередь хирурга.

Курс оперативной хирургии разделяется на общую и специальную части. В первой излагаются общие данные о хирургической операции и прикладной анатомии, элементарные оперативные приемы, из которых слагается хирургическая операция, способы укрепления животных при оперативных вмешательствах, методы обезболивания, профилактические мероприятия против инфицирования операционных ран, техника наложения повязок, а также простейшие хирургические операции, осуществляемые в различных участках тела. В специальной части изучаются анатомо-топографические данные и различные хирургические операции, производимые в каждой области тела.

1.2 Классификация хирургических операций

Хирургическая операция (оpera-действие, работа, труд) -совокупность механических воздействий на органы и ткани животного преимущественно с лечебной и диагностической целями.

Успешное выполнение хирургической операции немыслимо без знания анатомии оперируемой области, а также наблюдающихся в ней в нормальных условиях (при отсутствии патологических процессов) возрастных особенностей и индивидуальной изменчивости в строении и взаимоотношениях тканей и органов. Эти вопросы служат объектом изучения топографической (прикладной) анатомии.

Показания и противопоказания к операции ставят на основе тщательного клинического, а иногда рентгенологического, лабораторных и других специальных исследований.

Показания к операции могут абсолютными и относительными.

Абсолютными показаниями являются злокачественное новообразование, кровотечение, тимпания, пневмоторакс и др.

Относительными показаниями являются доброкачественное новообразование, неущемленная грыжа и др.

Противопоказания к операции обусловливаются общим состоянием животного в данный момент: истощение, старый возраст, обострение процесса, большой срок беременности.

Определение и классификация операций. Хирургическая операция, как способ лечения, применяется наряду с другими методами терапии: химическими, физическими и биологическими. Под хирургической операцией понимают совокупность кровавых и не кровавых механических приемов, выполняемых с помощью различных инструментов на тканях и органах живого организма.

Сообразно целенаправленности, хирургические операции разделяются на:

а) лечебные (среди них особое место занимают пластические, или восстановительные);

б) диагностические;

в) косметические -- для украшения животных (обрезание ушей и хвоста у собак и пр.);

г) экономические--с целью повышения продуктивности животноводства (кастрация);

д) экспериментальные, например при изучении функций органов (физиологические операции), разработке новых способов операции и пр.

Соответственно задачам и срочности, характеру и содержанию, хирургические операции могут быть:

1) Радикальные и паллиативные. Первые ставят своей

задачей более энергичное вмешательство с целью ликвидировать заболевание и предупредить его рецидивы. (например, операция при кариесе зуба--выдергивание зуба, при брюшных грыжах--закрытие грыжевого отверстия, при кишечной непроходимости--удаление кишечного камнями пр.).

Паллиативная операция осуществляется или в тех случаях, когда радикальное оперативное вмешательство ввиду плохого общего состояния больного животного противопоказано (например, баидажирование грыжи с одновременным впрыскиванием вокруг нее раздражающих средств)

Часто эти операции не устраняют причины болезни и поэтому бывают вынужденными.

2) Операции неотложные, вынужденно отложенные и свободного выбора. К неотложным операциям прибегают в случаях необходимости непосредственного спасения жизни; они осуществляются безотлагательно при ущемленных грыжах, кровотечениях,

удушье вследствие сужения дыхательных путей и пр. К вынужденно отложенным относятся операции, которые необходимы для больного, но не могут быть тотчас же выполнены в связи с его тяжелым общим состоянием. Операции свободного выбора не требуют немедленного их осуществления и могут быть в ряде случаев заменены другими методами лечения.

3) Операции асептические и гнойные. Первые производятся в неинфицированных тканях (в асептических условиях), гнойные же - при гнойно-некротических процессах.

4) Операции большие и малые, одно- и двухмоментные. К числу малых операций относят проколы и инъекции, вскрытие поверхностных абсцессов и др. Большими являются полостные операции, а также операции в глубоких тканях. При одномоментной операции оперативное вмешательство от его начала до конца выполняется в один прием, при двухмоментной - в два приема, с некоторым промежутком между ними (прокол слизистой сумки при гнойном воспалении ее, а затем, через 5--7 дней, удаление сумки).

Латинские названия операций обычно складываются из наименования оперируемого органа и термина, обозначающего применяемый прием: рассечение--tomia; иссечение--ectomia, вылущивание--extirpatio; частичное иссечение--resectio; удаление периферической части органа--amputatio, и т. д. (лапаротомия, уретротомия и пр.).

1.3 Техника операции и оперативные приемы

Содержание операции. Всякая хирургическая операция осуществляется в три этапа:

1) прежде всего приступают к оперативному доступу-- обнажению органа или очага, в котором развился патологический процесс и подлежащего оперированию (например, разрез брюшной стенки при операциях на органах брюшной полости); затем следуют:

2) оперативный прием--собственно оперативное вмешательство на больном органе. При этом необходимо соблюдать максимальную бережность по отношению к органу с тем, чтобы исключить серьезные нарушения жизнедеятельности его и организма в целом. Эта обязывает хирурга мыслить физиологически, а оперировать анатомически.

3) Заключительный этап операции - закрытие операционной раны, как завершение операции, это наложение швов, повязок, введение дренажа.

Конечный успех операции зависит не только от учета предоперационного состояния животного, характера и степени его поражения, не только от правильного выбора способа операции и хорошей техники ее выполнения, но также от тщательного осуществления асептики и обезболивания и от надлежащего ухода и содержания больного животного в послеоперационном периоде, от учета и предупреждения возможных ошибок и осложнений операции.

Вмешательство ветеринарного врача всегда подчинено экономическим соображениям. Операция считается удачной только тогда, когда она сберегает хозяйственную ценность животного.

2. Профилактика хирургической инфекции

Цель - изучить развитие и методы профилактики хирургической инфекции.

2.1 Понятие о хирургической инфекции

Под инфекцией понимают активное внедрение патогенных микробов в ткани организма, в которых они размножаются и оказывают в результате своей жизнедеятельности болезнетворное действие. Микроорганизмы попадают в организм животных из окружающей среды через раны кожи и слизистых оболочек, через дыхательные пути и тд. От инфекции следует различать простое загрязнение раны, при котором микробы, попавшие в ткани, не проявляют своего патогенного действия вследствие обезвреживания их защитными силами организма животного.

В инфекционном процессе играют роль: микроорганизм - возбудитель инфекции; макроорганизм, в котором микроб проявляет свою жизнедеятельность; внешняя среда, оказывающая влияние на свойства макро- и микроорганизмов. От исходного состояния этих трех факторов, их взаимоотношений и зависит клиническое проявление инфекционного процесса.

Исходя из современных представлений о роли микробного фактора в развитии инфекционного процесса, принято различать: микробное загрязнение, инфект, инфекцию и микрофлору.

Под микробным загрязнением понимают обсеменение различными микробами, находящимся во внешней среде, поверхностей кожи, слизистых оболочек, ран, ожогов и др. Микробы при этом только механически контактируется с тканями и не вызывают в организме никаких видимых реакций.

Микрофлора - это более или менее постоянное поселение микробов, приспособившихся к условиям жизни на наружных покровах тела, слизистых оболочках, в ранах, язвах, свищах и дефектах тканей. Микробов, приспособившихся к условиям жизни в ране, принято называть раневой микрофлорой.

Инфект - это патогенные микробы микробного загрязнения или микрофлоры, адаптировавшиеся к раневой или тканевой среде и обладающие способностью проникать через тканевые барьеры или покровы в ткани, размножаться в них, выделять токсины и вызывать функциональные нарушения в организме.

Инфекция -это сложный патологический процесс, возникающий вследствие внедрения инфекта во внутреннюю среду организма. При внедрении инфекта в ткани в организме взаимодействуют два основных процесса: защитный - со стороны макроорганизма и разрушительный - со стороны патогенных микроорганизмов.

2.2 Стадии развития хирургической инфекции

Развитие хирургической инфекции всегда сопровождается утилизацией микробами питательных веществ, циркулирующих других тканях, гибелью тканевых элементов и накоплением в пораженных тканях продуктов жизнедеятельности микробов -- токсинов. Одни из них -- экзотоксины -- выделяются при жизни бактерий, а другие -- эндотоксины -- содержатся в самых телах бактерий и освобождаются после смерти и растворения бактерий. При гнилостной инфекции образуются алкалоиды гниения -- птомаины.

Кроме токсинов, микробы вырабатывают различные протеолитические ферменты, расплавляющие клетки и ткани, и гликолитические ферменты, расщепляющие углеводы.

На скорость развития и распространения инфекции могут оказывать влияние следующие факторы:

1) локализация травмы: инфекция распространяется тем быстрее, чем подвижнее ткань в области повреждения;

2) структура поврежденных тканей и кровоснабжение их; например, в рыхлой ткани и мускулах инфекция развивается быстрее, чем в плотных тканях -- связках, фасциях, сухожилиях и суставах;

3) характер повреждения тканей; например, раны с размятыми, раздавленными тканями, содержащие кровяные сгустки, создают лучшие условия для развития патогенных микробов, чем раны с ровными поверхностями и без кровяных сгустков.

Чем больше нарушено кровоснабжение, тем легче возникает инфекция, особенно анаэробная; наибольшую опасность в этом отношении представляют ушибленные, глубокие раны с повреждением крупных сосудов, с размозженной мускульной тканью, с раневыми карманами, содержащими кровяные сгустки, при затрудненном доступе к ним кислорода;

4) количество и биологические свойства возбудителя инфекции: чем вирулентнее микробы и чем больше попало их в рану, тем скорее можно ожидать развития тяжелой раневой инфекции (гнилостные и анаэробные микробы, за исключением бацилл столбняка, имеют более короткий инкубационный период и поэтому начинают проявлять свою деятельность первыми; аэробные микробы начинают размножаться чаще всего через 16 часов или сутки);

5) ассоциация микробов; например, бациллы столбняка проявляют свое токсическое действие быстрее в случаях, когда они попадают в рану вместе с обычными аэробными микробами; столбнячная моноинфекция часто оказывается мало опасной, так как бациллы столбняка быстро поглощаются и разрушаются фагоцитами;

6) механические нарушения покоя раны, термические и химические агенты, время и характер оказания первой помощи.

2.3 Виды хирургической инфекции

Возбудителями хирургической инфекции могут быть различные микробы: аэробы, анаэробы. Одни из них имеют оптимум роста в щелочной среде и поэтому называются алкалинофилъными; другие размножаются при наличии кислой реакции среды и называются ацидофильными. Встречаются также микробы, растущие почти одинаково хорошо как в кислой, так и в щелочной среде. К ацидофильным микробам относится палочка молочнокислого брожения, гноеродный стрептококк; к алкалинофильным -- палочка синего гноя, В. faecalis alcaligenes, В. sporogenes, Enterococcus; легко приспособляющимися микробами является большинство стафилококков и кишечная палочка.

Огромное значение (в смысле развития хирургической инфекции и борьбы с ней) имеет также разделение микробов по особенностям их химического состава, обусловливающим свойство прочно удерживать или, наоборот, быстро отдавать окраску, предложенную Грамом. Микробов, окрашивающихся по методу Грама, называют грамоложительными, а обесцвечивающихся после окраски по Граму, при последующей обработке мазка спиртом,-- грамотрицательными.

Представителями грамположительных микробов являются: Staphylococcus aureus, Streptococcus haemolyticus, Streptococcus viridans, Enterococcus (Streptococcus faecalis), B. perfringens, B. histolyticus, Vibrion septique, B. oedematiens, B. subtilis, B. anthracis, B. botulinus, B. tetani, а также Actinomyces и Mycob. tuberculosis.

К грамотрицателъным микробам относятся: В. pyocyaneus, B. coli commune, Proteus vulgaris, Brucella, В. spogenes (В. putrificus verrucosus), B. necrophorus, B. faecalis alcaligenes, гонококк, менингококк, В. mallei, Pneumobacillus.

В настоящее время хирургическую инфекцию принято классифицировать по видовому составу микробов, вызвавших ее, по течению и условиям ее возникновения.

Если инфекция развивается вследствие внедрения в ткани животного микробов одного вида, например стафилококков, она носит название одновидовой инфекции (monoinfectio). Инфекцию, вызванную размножением в тканях бактерий различных видов, называют смешанной (polyinfectio); в этих случаях нередко обнаруживают в первичном очаге ассоциацию патогенных, условно патогенных (или так называемых комменсалов) и непатогенных микробов.

По течению хирургическая инфекция может быть острой и хронической.

По условиям возникновения различают три вида инфекции: первичную, вторичную, повторную.

Первичная инфекция развивается вслед за ранением. Если к развившейся инфекции присоединяется через некоторое время заражение другими видами бактерий, то эту инфекцию называют вторичной, или секундарной.

Повторное заражение микробами, вызвавшими первоначальное заболевание, принято называть повторной инфекцией (reinfectio).

3. Асептика и антисептика

Цель - изучить методы профилактики хирургической инфекции.

3.1 Методы профилактики хирургической инфекции

Многие хирурги делят историю хирургии на три-четыре неравных периода: а) доантисептический, продолжавшийся с древних времен до 60-х годов XIX столетия; б) антисептический, длившийся с 60-х до 90-х годов прошлого столетия; в) период асептики с 90-х годов прошлого столетия и до империалистической войны (1914--1918 гг.) и г) современный период, примиривший главнейшие принципы двух последних периодов и положивший в основу хирургической работы асептику, отдавая должное антисептике при измененном взгляде на нее.

Деление истории хирургии на перечисленные периоды показывает нам, какую большую роль сыграла антисептика в развитии этой отрасли науки,

До Пастера и Коха еще не было известно, что главным врагом животного мира является инфекция, что пути ее внедрения в организм очень разнообразны и что открытая травма служит постоянными воротами для ее проникновения в тело животного. Открытая травма при попадании в нее инфекции вызывала такие серьезные изменения, и сдвиги в организм, что возникавший на этой почве патологический процесс часто кончался смертью больного. Такие исходы открытых травм, случайных или операционных, доводили иногда многих честных хирургов до отчаяния. Русский хирург Н. И. Пирогов, отец русской хирургии, при мысли о количестве погибающих от раневых осложнений в госпиталях с горечью писал: «Не знаю, чему больше удивляться, стоицизму ли хирургов, занимающихся изобретением новых операций, или доверию, которым продолжают еще пользоваться госпитали у правительства и общества».

Антисептика (anti - против, sepsis - гниение, т.е. противогнилостный). Под антисептикой понимали все химические методы борьбы с инфекцией в самой ране и со всем тем, что приходит с ней в соприкосновение.

Пастер в 70-х годах прошлого столетия сообщил, что инфекцию можно легко убить высокой температурой, особенно влажной, в результате чего хирурги стали переходить на обработку инструментов (Бюхнер, 1878 г,), перевязочного материала и пр. физическими методами-- методами асептики.

Асептика (а - без, sepsis - гниение, т. е. безгнилостный). Под асептикой понимают все, главным образом физические, способы предупреждения заноса инфекции в рану. Особенно интенсивная разработка методов асептики началась в 90-х годах школой Бергмана.

В настоящее время к антисептическому средству, применяемому для уничтожения инфекции в организме, предъявляются совершенно определенные требования: а) оно должно обладать максимальной бактерицидностью, б) оно должно быть минимально органотропным, т, е, оно не должно не только убивать, но даже угнетать живую клетку при непосредственном воздействии на нее или на организм в целом (при всасывании вещества лимфатической и кровеносной системой), в) оно не должно разлагаться или ослабевать в своей бактерицидности при контакте с раневым отделяемым или живыми клетками раны, г) оно должно быть стойким и не изменять своей химической природы в растворах, д) оно должно тонизировать и благотворно влиять на живую клетку при соприкосновении с ней.

Антисептических веществ, полностью отвечающих всем указанным требованиям, пока нет, но они должны рассматриваться и исследоваться с этих точек зрения. Ясно также, что не всякое средство оказывает одинаковый эффект при любых видах инфекции. Многие из них обладают избирательным свойством и на одни формы инфекции действуют более бактерицидно, чем на другие, или даже совсем не влияют на них.

Под асептикой в старом ее представлении понимали предупреждение проникания микробов в рану путем уничтожения их на предметах, соприкасающихся с поверхностью раны, высокой температурой, без использования химических средств. Сторонники асептики (Бергман и др.) отрицали значение воздушной инфекции. Главную опасность, по их мнению, представляет контактная инфекция, которую легко убить на предметах, соприкасающихся с раной (инструментах, шовном и перевязочном материале), физическими методами стерилизации. Они полностью отказались от применения антисептических средств.

Стало ясно, что одна лишь асептика не обеспечивает надежной профилактики инфекции при операциях и лечении ранений. Известно также, что дезинфекция рук и операционного поля невозможна без применения антисептических средств. Так возник комбинированный метод профилактики хирургической инфекции.

За последние десятилетия получены новые антисептические вещества, обладающие не только бактериостатическим, но и биологическим действием на ткани в результате раздражения, активизации физиологической системы соединительной ткани организма и других ее тканевых элементов (сульфаниламиды и антибиотики, фитонциды), в связи, с чем задачи антисептики стали более широкими.

Однако теперь перечисленные выше задачи профилактики хирургической инфекции не ограничиваются асептико-антисептическими мероприятиями.

3.2 Подготовка операционного поля и рук хирурга

Обработка операционного поля.

Подготовка оперируемой области. За день до операции перед обмыванием животного оперируемую область надо выстричь и выбрить, широко захватывая смежные с ней участки; после обмывания животного желательно закрыть подготовленную область повязкой. Нередко по ряду обстоятельств, а также при неотложных операциях операционное поле готовят непосредственно перед оперативным вмешательством; при этом, наоборот, избегают обмывания водой с мылом, а кожу бреют сухим способом. Если же операционное поле очень загрязнено, лучше смыть грязь 0,25--0,5% раствором нашатырного спирта и после удаления шерсти обязательно вытереть кожу насухо; еще лучше пользоваться для этой цели бензином или спиртом.

Выстригают оперируемую область при помощи изогнутых по плоскости ножниц, а еще лучше - машинками для стрижки овец; выбривают обыкновенными или безопасными бритвами.

Способы подготовки рук весьма многочисленны. Требования, предъявляемые к ним, следующие: дезинфекция рук не должна оказывать губительного влияния на защитную функцию кожи, т. е. сохранять нормальную секрецию сальных желез, не вызывать чрезмерно быстрого ороговения и шелушения эпидермиса, не раздражать кожу и сохранять ее эластичность, предупреждать образование трещин, заусениц и пр. С другой стороны, какими бы сильнодействующими ни были антисептические средства, они не могут воздействовать на микробы, расположенные глубоко в коже. Поэтому современные способы подготовки рук к операции основаны на использовании дубящих свойств антисептиков, которые уплотняют верхние слои кожи и тем самым закрывают кожные отверстия протоков желез, преграждая на срок операции выход из них микроорганизмов. В связи с этим вытекают три основных приема современной подготовки рук к операции:

а) механическая очистка;

б) химическая дезинфекция;

в) дубление кожи.

Наиболее рациональными оказались способы, включающие механическую обработку рук и последующую дезинфекцию их. Тем не менее ни один из этих способов также не дает достаточной асептичности кожной поверхности на длительный срок. Поэтому, чтобы достичь максимальной эффективности обработки рук, во время операции их нужно обмывать от крови и повторно дезинфицировать (при полостных операциях со вскрытием различных отделов пищеварительного тракта такие обработки повторяют несколько раз).

Механическая обработка рук с предварительным обрезанием ногтей и заусениц должна предшествовать любому способу их дезинфекции. Целью ее является удаление с поверхности кожи грязи и максимального количества микрофлоры. Существуют два способа такой механической обработки.

1) Мытье рук в течение 8--10 минут горячей водой с мылом при помощи щеток. Хорошо растворяет жир и грязь калийное (зеленое) мыло, имеющее консистенцию мази; часто пользуются также хозяйственным мылом; иногда к нему добавляют антисептические средства (карболовое мыло).

2) Лучшим способом, предложенным Спасокукоцким и Кочергиным, считают тщательное обмывание рук в течение 3--5 минут теплым 0,5% раствором аммиака. Руки моют в эмалированных тазах, а еще лучше в текучей тонкой струе из бутыли, с помощью комков марли или ваты. Этот способ дает надежное обезжиривание и механическую очистку, не раздражает и не вызывает набухания кожи, а также сужения отверстий выводных протоков сальных и потовых желез, что облегчает глубокое пропитывание антисептическим средством толщи кожи.

Дезинфекция рук. Наиболее употребительны следующие способы.

После описанной выше механической обработки водой с мылом руки насухо вытирают стерильным полотенцем или марлевой салфеткой, а затем в течение 3 минут тщательно протирают стерильным марлевым или ватным шариком, обильно пропитанным раствором иода в спирте (иодированным спиртом) в концентрации 1:3000 (способ Б. М. Оливкова). В некоторых случаях пользуются более концентрированными растворами иода 1:1000, например вскоре после производства гнойных операций или вскрытия трупов.

Руки моют не менее 5 минут в 0,5% растворе нашатырного спирта, а затем вытирают насухо и в течение 3--5 минут обрабатывают 70--96° спиртом (способ Спасокукоцкого и Кочергина).

Еще более эффективно, по нашим наблюдениям, сочетание этих двух способов: механической обработки рук 0,5% раствором нашатырного спирта с последующей дезинфекцией их иодированным спиртом.

Некоторые антисептические вещества нередко совмещают в себе свойства бактерицидные и дубящие (спиртовой раствор йода, раствор бриллиантовой зелени и др.), представляя, таким образом, бактерицидный дубитель или дубящий антисептик.

Независимо от способа дезинфекции, необходимым дополнением к подготовке рук является обязательное смазывание настойкой иода под ногтевых пространств и ногтевых лож.

В процессе операции, требующей более или менее длительного времени, необходима повторная обработка рук: смывание крови раствором нашатырного спирта или каким-либо антисептическим раствором с последующей дезинфекцией иодированным спиртом или раствором сулемы 1: 1000.

3.3 Методы стерилизации инструментов, шовного и перевязочного материала

Стерилизация инструментов.

Стерилизация кипячением. Инструменты кипятят в специальных стерилизаторах различных конструкций. Для нагревания стерилизаторов используют различные источники тепла: плиту, примус или керогаз, спиртовую горелку или электричество.

Инструменты перед стерилизацией тщательно вытирают, удаляя вазелин. Каналы игл промывают эфиром или спиртом. Сложные инструменты с плотно примыкающими друг к другу частями стерилизуют в полураскрытом или разобранном виде. Режущие инструменты (скальпели, ножницы) заворачивают в марлю и кладут на дно сетки. Для сохранения остроты их опускают перед стерилизацией на 5 минут в 5% раствор лизола на глицерине. Когда пользуются обыкновенной водой, содержащей различные соли, для предохранения инструментов от ржавчины и образования темных пятен к воде добавляют щелочи: карбонат натрия (углекислую соду) (1%), едкий натр (0,1%), борат натрия (буру) (3--5%) и др. Эти растворы осаждают из воды на стенки стерилизатора соли, предупреждая таким образом коррозию инструментов, несколько повышают точку кипения, способствуют лучшему растворению остатков вазелина на инструментах и обеспечивают большую эффективность стерилизации (действие высокой температуры в сочетании с антисептическим свойством раствора).

Срок стерилизации с момента вторичного закипания: в растворе углекислой соды--не менее 15 минут, буры--20 минут и едкого натра--10 минут (в кипяченой воде, не содержащей солей,--30 минут). Инструменты, загрязненные гноем или трупным материалом, кипятят в течение 30 минут в 0,5-- 1% растворе карболовой кислоты или лизола, в 0,25% растворе едкого натра и других антисептических растворах.

Шприцы и стеклянные предметы лучше кипятить 20-- 30 минут отдельно в кипяченой или в дистиллированной воде.

Химическая стерилизация инструментов и шприцев осуществляется путем погружения их на некоторое время в различные антисептические растворы:

1) в жидкость Каретниковой (формалина 20,0, карболовой кислоты 3,0, углекислой соды 15,0 и воды 1 литр) на 30 минут; 2) в раствор бактерицида 1 : 3 000 с прибавлением к нему 1% соды--на 10 минут; 3) в 1% спиртовый раствор бриллиантовой зелени--на 15 минут; 4) в 3--5% раствор карболовой кислоты--на 30--60 минут. Химическая стерилизация допускается лишь в крайних случаях как менее эффективный, в сравнении с кипячением, способ обезвреживания инструментов.

Стерилизация горячим воздухом производится в сушильных шкафах при температуре 150--160° в течение 20--30 минут.

Стерилизация обжиганием спиртовым пламенем применяется только при использовании эмалированной посуды, крупных зубных и акушерских инструментов. Инструменты от обжигания быстрее покрываются темными пятнами и изнашиваются.

Стерилизация катетеров и резиновых предметов возможна только в дистиллированной или кипяченой воде, но не в щелочных растворах, в которых Они портятся. Плетеные катетеры и бужи, покрытые копаловым лаком, не выносят кипячения; поэтому их чаще обезвреживают в антисептических растворах (так же, как и инструменты). Иногда применяют стерилизацию парами формалина в стеклянных сосудах в течение 24--48 часов.

Стерилизация шовного материала.

Шовный материал и его характеристика. Шелковая натуральная нить в тканях организма рассасывается очень медленно; чаще же она инкапсулируется. При инфицировании она не инкапсулируется и не рассасывается, а способна годами поддерживать нагноение (лигатурные свищи). Шелк обладает также капиллярными свойствами, что при неасептичном оперировании ведет к нагноению каналов швов. Искусственный шелк не рассасывается.

Хлопчатобумажные нити обладают в основном теми же свойствами, что и шелк.

Кетгут изготовляется из кишечной стенки жвачных в виде различной толщины нитей. Он способен легко рассасываться в тканях, однако в различные сроки, от 10 до 24 (70) дней, в зависимости от толщины и способа обработки. Кетгутовый шов к 5--7-му дню расслабляется, поэтому его употребляют только для погружных швов в местах со слабым натяжением тканей, а также в стенках полостных органов (мочевого пузыря и др.).

Конский волос эластичен, прочен, устойчив при стерилизации, не раздражает ткани и применяется при пластических операциях, для соединения стенок внутренних органов и других операций.

Металлическая проволока. Наиболее употребительна проволока бронзо-алюминиевая, меднолуженая, серебряная, магниевая. Прочность, гибкость, отсутствие набухания, гладкая поверхность--положительные качества этой разновидности шовного материала; бронзо-алюминиевая и серебряная проволока обладает, кроме того, антисептическим действием, а магниевая рассасывается в тканях. Вследствие присущих ей свойств олигодииамии, бронзо-алюминиевая и меднолуженая проволока не прорезает ткани, заслуживает широкого практического применения. Никелиновую проволоку из-за ее жесткости и способности прорезания тканей употреблять не следует.

Стерилизация шелка и ниток. Шелк наматывают нетуго на стеклянные палочки, марлевые валики или предметные стекла и кипятят 15 минут в 0,1 % растворе сулемы (Дениц). Стерильный материал хранят в таком же растворе или в абсолютном спирте в герметически закрытой банке.

По способу Кохера сначала кладут шелк на 12 часов в эфир, затем на 12 часов в алкоголь и только после этого стерилизуют кипячением в растворе сулемы.

Кипячение шелка и ниток в растворе сулемы--весьма эффективный способ стерилизации. Благодаря содержащимся в шелке белкам и соединению их с сулемой, в толще нитей образуется ртутный альбуминат (в хлопчатобумажных нитях белка нет, однако ртутный альбуминат образуется впоследствии с тканевыми белками вокруг нитей). В тканях ртутный альбуминат дезинфицирует канал шва, вызывает сильную пролиферацию соединительнотканных клеток вокруг шелковых нитей, чем ускоряется процесс их инкапсулирования.

Хлопчатобумажные нитки стерилизуют так же, как и шелк, а, при возможности, сначала, с целью удаления крахмала, их кипятят 30 минут в растворе соды, после этого опускают в 10% раствор целлулоида на ацетоне, а затем уже кипятят в 0,1% растворе сулемы.

При отсутствии сулемы можно применять химическую стерилизацию шелка, погружая нити последовательно на 15 минут в 0,5% раствор нашатырного спирта и на 15 минут в 2% раствор формалина на 70° спирте (Садовский) или опускают на 4 часа в смесь из равных частей 8% водного раствора формалина и 5% водного раствора таннина (Гинковский). Шелковые нити, обработанные раствором формалина, сохраняют свою прочность, не раздражают тканей и, по некоторым данным, даже ускоряют заживление раны благодаря действию на ткани выделяющихся из нитей малых количеств формалина.

Стерилизация кетгута. Среди многочисленных способов химической обработки кетгута (кипячение кетгута не производится) наиболее надежным

является погружение его: а) на трое суток в 4% водный раствор формалина (Покотило); б) на 14 дней в 1% спиртовый раствор йода и йодистого калия (после обезжиривания в течение 12 часов в бензине и высушивания (Губарев); в) последовательно на две недели в 1% раствор йода в бензине и на одни сутки в йод-эфир-вазелиновую жидкость: lodi puri 0,3, Aetheris aethylici q. s. ut f. sol., Olei vaselini med. ster. ad 300,0. Хранят кетгут в этой же жидкости (Оппель). Наконец, кетгут можно погружать на трое суток в жидкость по прописи: спирта 70°--200,0, глицерина--5,0; настойки йода--8,0 и йодистого калия--6,0 (в ней же кетгут хранят длительное время).

Стерилизация конского волоса. Конский волос, после предварительного тщательного мытья водой с мылом и погружения на одни сутки в спирт-эфир, кипятят в течение 3 дней по 20 минут в 0,1% растворе сулемы; после каждой стерилизации волос помещают в спирт, в котором он сохраняется и после стерилизации до употребления (Боголюбов).

По Л. И. Целищеву, конский волос погружают на 5---8 минут в подогретый до 60° водный раствор мыльного спирта в разведении 2:100, затем прополаскивают несколько раз в горячей воде, слегка обсушивают марлей и опускают на 3 часа в эфир. После этого обезжиренный таким образом конский волос стерилизуют в автоклаве 25 минут при 1 атмосфере и хранят в 96° спирте (в случае необходимости конский волос запаивают в пробирки со спиртом).

Стерилизация проволоки. Независимо от вида проволоки ее стерилизуют кипячением (с инструментами).

Стерилизация перевязочного материала и хирургического белья

Весь перевязочный материал укладывают в один или, что целесообразное, в два бикса: в один--шарики, тампоны, салфетки, бинты, дренажи и др., в другой хирургическое белье. При отсутствии биксов можно пользоваться каркасными коробками, изготовленными из проволоки и обтянутыми полотном, полотняными мешками, или же перевязочный материал заворачивают в простыни, бумагу.

Стерилизация в автоклаве. В этом аппарате перевязочный материал стерилизуют горячим сухим паром под высоким давлением.

При 1,5 атмосферы давления в автоклаве температура в нем поднимается до 121°; срок стерилизации (с момента доведения давления до данного уровня)-- 30 минут; при давлении в 2 атмосферы (134°) срок стерилизации--20 минут. Более длительная стерилизация при высоком давлении отражается на прочности перевязочного материала и белья.

Стерилизация текучим паром производится в специальном аппарате. ведре или баке с крышкой и сеткой, укрепляемой над поверхностью воды; на сетку складывают перевязочный материал. Воду в аппарате кипятят в течение 2 часов.

Стерилизация утюжением представляет одну из простейших форм обработки горячим паром и применяется для обеззараживания хирургического белья, марли и пластов ваты.

4. Инъекция, инфузия, кровопускание

Цель - изучить и овладеть техникой инъекций, пункции, кровопускания, инфузии и прокола.

4.1 Виды и техника инъекции

Многие лекарственные вещества и биологические препараты (вакцины, сыворотки) вводят внутрикожно, подкожно, внутримышечно, внутривенно в различные анатомические полости (грудная, брюшная, суставная и др.), в костный мозг и т.д.

Различают вливания и впрыскивания.

Вливанием называют введение больших количеств растворов в подкожную клечатку, внутривенно, внутриартериально или внутрикостно.

Введение небольших количеств растворов под кожу и внутримышечно носит название впрыскиваний, или инъекций.

Прокол тканей, стенок кровеносных сосудов и анатомических полостей, производимый с диагностической или лечебной целью, носит название пункции.

Пункции, инъекции и вливания являются ответственными оперативными вмешательствами. При их выполнении необходимо строго соблюдать правила асептики. Растворы лекарственных средств употребляют только стерильные, подогретые до температуры тела (37-38⁰).

Подкожными инъекциями пользуются для введения лекарственных веществ, а также сывороток и вакцин. Типичными местами для таких инъекций являются: у крупных животных--боковая поверхность шеи (выше яремного жолоба), область груди, лопатки и боковой грудной стенки; у собак и кошек--шея, боковая грудная стенка, нижняя часть живота и внутренняя поверхность бедра; у свиней--область, затылка, непосредственно позади от основания ушной раковины, коленная складка, нижняя поверхность живота и внутренняя поверхность бедра.

В месте инъекции выстригают шерсть. Кожу протирают настойкой иода, иодированным спиртом. Перед уколом необходимо повернуть шприц иглой кверху и, немного продвигая поршень, удалить из шприца и иглы пузырьки воздуха. Затем большим и указательным пальцами левой руки приподнимают кожу в складку и в основание ее вкалывают под углом в 45° иглу, соединенную со шприцем. Срез иглы должен быть обращен кверху. Если шприц приходится наполнять несколько раз, иглу не извлекают, а оставляют в складке. По окончании инъекции кожу смазывают настойкой иода и слегка массируют, чтобы скорее рассосалась жидкость. Повторные инъекции в одном и том же месте допускаются только спустя несколько дней. При вливании под кожу больших количеств жидкости (физиологического раствора, сыворотки) иглу соединяют с инъекционным аппаратом Боброва или большим шприцем. Впрыскивание производят медленно, слегка массируя область инъекции поглаживанием ладонью. При этом в одно место можно вводить не более 250--300 мл раствора, в противном случае часто развивается некроз подкожной клетчатки: и кожи. Особенно часто возникает омертвение тканей после инъекции растворов, содержащих сосудосуживающие средства, например адреналин. Иногда некроз наступает при введении горячих растворов (свертывание коллоидов и замедление всасывания).

Внутримышечное впрыскивание.

Внутримышечные инъекции производят в ягодичной области, в плечевой части грудной мышцы или в трехглавый мускул плеча.

Прочную, с острым скосом на конце иглу вкалывают перпендикулярно к поверхности кожи. Глубина укола зависит от упитанности животного и толщины слоя мышц в области инъекции (у лошади 4--6 см), однако не рекомендуется продвигать иглу на всю ее длину, до муфты, так как при случайном переломе ее трудно бывает извлечь. Иглу вкалывают в толщу мышцы без шприца, чтобы проверить, не попала ли она в сосуд. После инъекции область укола заклеивают ватой с коллодием или покрывают пастой. При не асептичных внутримышечных впрыскиваниях могут появиться глубокие абсцессы и флегмоны.

Внутривенное вливание.

Преимуществом этого способа является быстрота введения и действия лекарственных растворов на организм, что имеет особенно важное значение при упадке сердечной деятельности, коллапсе, шоке и других тяжелых заболеваниях животного.

Местом внутривенных вливаний у лошадей служит яремная или наружная грудная вена, у крупного и мелкого рогатого скота--яремная или подкожная вена живота, у собак и кошек--бедренная, яремная, плюсневая передне-наружная вена или подкожная вена предплечья, у свиней--большая ушная вена, у птиц-- подкожная локтевая вена, у верблюдов--яремная вена.

4.2 Кровопускание и инфузии

Показаниями к кровопусканию служат:

1) интоксикация организма (уремия, эклампсия и др.);

2) отравление окисью углерода, сернистым ангидридом и другими ядами;

3) ревматическое воспаление копыт, экссудативный асептический плеврит и брюшная водянка;

4) перегрузка сердца при эмфизема и отеке легких;

5) необходимость понижения внутричерепного давления и других заболеваниях;

6) диагностические цели (взятие крови в небольших количествах);

7) стремление улучшить откорм свиней и крупного рогатого скота;

8)взятие крови у гипериммунизированных животных на биофабриках.

При изъятии небольших количеств крови с диагностической целью пользуются тонкими кровопускательными иглами или инфузионными, а у мелких животных--тонкими инъекционными. Если требуется обильное кровопускание, иглы берут большого диаметра (внутренний диаметр иглы должен быть 4--6 мм).

Техника операции. Кровопускание у лошадей, крупного и мелкого рогатого скота производят из яремной вены. Кожу прокалывают иглой со вставленным в нее мандреном; непосредственно перед проколом стенки вены мандрен вынимают.

При обильных кровопусканиях лучше предварительно прижать вену при помощи шейного веревочного или резинового жгута; после этого вену обнажают небольшим продольным разрезом кожи длиной до 1 --1,5 см (если кожа тонкая, разреза не требуется).

У откармливаемого крупного рогатого скота в возрасте после двух лет кровопускание осуществляют с целью улучшения откорма. Кровь берут в количестве 10 мл на 1 кг веса животного через 20-дневные интервалы (или 13 мл на 1 кг через месячные интервалы).

У гипериммунизированных коров (для получения сывороток) кровопускания делают четыре раза в месяц из расчета 14--15 мл на 1 кг живого веса, с перерывами: между первым и вторым, третьим и четвертым 2 дня, между вторым и третьим 10--12 дней.

У свиней малые количества крови (например для диагностических исследований) берут из уха, надрезая скальпелем его большую ушную вену. Если от свиней получают большие количества крови (например, с целью улучшения откорма или у гипериммунизированных животных), местом кровопускания служит хвост. На конце его выстригают щетину; кожу обмывают и хвост опускают на 3--4 минуты в банку с умеренно горячей водой, чтобы вызвать гиперемию. Конечную часть хвоста тщательно дезинфицируют, после чего острыми ножницами или скальпелем отсекают отрезок длиной 1,5--2 см и собирают кровь в банку. По окончании операции рану дезинфицируют, а кончик хвоста сдавливают на 3--4 суток резиновым кольцом диаметром до 1 см.

У птиц легко получить кровь путем скарификации гребня или бородок.

Однократные дозы выпускаемой крови с лечебной целью составляют: у лошади 2--6 л, у крупного рогатого скота 3--8 л, у мелкого рогатого скота 200--400 мл, у свиньи 200--600 мл, у собак 50--200 мл, у курицы 10--40 мл и у крупных птиц 40--60 мл.

4.3 Виды и техника пункции

Пункция вен у лошади и жвачных. Крупным животным вливание в вену производят в их естественном положении, прибегая в случае необходимости к отвлекающим средствам (закрутке, носовым щипцам).

Место пункции выстригают и дезинфицируют настойкой иода. Для прокола держания шприца при различных инъекциях: вены пользуются специальными инфузионными иглами подкожной, умеренно скошенным срезом и особой канюлей, вставляемой в муфту иглы.

Канюля должна находиться на конце трубки инфузионного аппарата. Растворы вливают при помощи аппарата Боброва, Конькова и др. или, наконец, большого шприца без поршня. При отсутствии таковых обычную стеклянную воронку соединяют так же, как и аппарат, длинной резиновой трубкой с канюлей, легко вставляющейся в муфту иглы.

Местом пункции яремной вены у лошади и жвачных служит граница верхней и средней трети шеи. Голову животного слегка поднимают вверх, но так, чтобы не напрягались мышцы яремного желоба. Перед операцией сдавливают большим пальцем левой руки яремную вену непосредственно ниже места пункции, вследствие чего сосуд фиксируется, наполняется кровью и становится хорошо заметным в яремном желобе. В исключительных случаях на шею накладывают резиновый жгут, чтобы максимально прижать вену. У жвачных этот прием, используется довольно часто. Иглу фиксируют между указательным и большим пальцами правой руки.

Иглу направляют вверх, против тока крови, по оси сосуда и обязательно на средине контура последнего под углом в 40--45° к коже, чтобы предотвратить повреждение противоположной стенки сосуда. Продвинув иглу на 2--3 см, прокалывают кожу и стенку вены в один прием. При: попадании иглы в просвет вены кровь сразу же начинает вытекать свободной струей, соответствующей внутреннему диаметру иглы. Как только убеждаются в правильном положении иглы, в ее муфту тотчас же вставляют канюлю аппарата, вся система которого должна быть предварительно заполнена раствором, чтобы в вену не попал воздух. Затем сразу же снимают палец с вены и поднимают сосуд с раствором несколько выше уровня места укола (высоко держать аппарат не следует, так как вливаемая жидкость, например раствор хлоралгидрата, должен поступать в вену медленно, со скоростью не более 20--30 мл в минуту). Прекращение свободного поступания раствора в вену указывает на смещение иглы.

Для пункции наружной грудной вены у лошади (коровы) сосуд зажимают пальцем непосредственно позади плечевого пояса. Иногда того же достигают путем наложения (обхватом) длинной резиновой трубки с передвижной подкладкой, которую устанавливают против вены. Пункцию производят сзади места прижатия сосуда, направляя иглу по току крови (вперед и отчасти вверх). В момент прокола кожи иглу держат под углом 40--45°, а при пункции вены--30--35°. Кожу позади точки укола прижимают пальцами левой руки и одновременно оттягивают назад. Это обеспечивает лучшее попадание иглы в вену. Иглу продвигают в просвет вены на длину 2 ~3 см.

Прежде чем извлечь иглу: а) вынимают канюлю из муфты и, одновременно сдавливая вену к центру от места пункции, промывают иглу струей крови или опускают аппарат вниз с целью получить обратный ток жидкости и крови); б) после этого прижимают вену к периферии от места пункции и осторожно извлекают иглу. Первым приемом устраняют опасность попадания раствора в около сосудистую клетчатку, вторым--образования гематомы.

Пункция вен у собак и кошек. При пункции яремной вены последнюю сдавливают пальцами у основания шеи; шею при этом вытягивают. Укол производят в направлении спереди назад обычной инъекционной иглой, соединенной со шприцем.

При внутривенном вливании через плюсневую передне-наружную вену помощник должен сдавить пальцами конечность в верхней трети голени. Когда вена наполняется кровью и становится легко заметной на выбритом участке кожи, иглой, надетой на шприц, производят пункцию по току крови. С момента попадания иглы в вену прекращают сдавливание и приступают к медленной инъекции раствора.

Если во время инъекции сразу же образуется припухлость, то это указывает на неправильное положение иглы. Таким же образом выполняется пункция подкожной вены предплечья и бедренной вены. Пункция большой ушной вены у свиней. Основание уха сдавливают резиновой трубкой или прижимают вену пальцем. Иглу вкалывают в направлении к основанию ушной раковины.

Пункция подкожной локтевой вены у птиц. В области локтевого сустава на внутренней поверхности крыла сдавливают пальцем вену. Укол делают под углом 35--40° на уровне локтевого сгиба. Лучше предварительно обнажить сосуд коротким разрезом кожи.

4.4 Проколы различных полостей организма

Пункция плевры (плевроцентез).

Пункция плевры показана в случаях необходимости исследования характера экссудата и его микрофлоры или удаления накопившегося экссудата при экссудативных плевритах и транссудата при водянках.

Инструментарий. Для пробного прокола необходимо длинная толстая инъекционная игла и шприц. Опорожняющие проколы производят при помощи различных отсасывающих аппаратов.

Места пункций находятся: у лошади--в 7-м или 8-м межреберном промежутке слева и в 5-м или 6-м справа; у коров--в 7-м слева и в 6-м справа; у свиней--в 8-м слева и в 7-м справа; у собак и кошек--в 8-м слева и в 6-м или 7-м справа. Нужный промежуток определяют путем отсчитывания соответствующего количества ребер, начиная с последнего (у лошади--18 ребер, у коровы--13, у свиньи--14, у собаки и кошки--по 13). Уровень прокола устанавливают по реберно-хрящевым соединениям (у лошади--на 2--5 см выше наружной грудной вены).

Техника прокола. Кожу смещают в сторону. Иглу (троакар) вкалывают в перпендикулярном направлении у переднего края ребра. О том, что игла попала в плевральную полость, легко узнают по отсутствию сопротивления и истечению жидкости (у лошади глубина прокола--3--4 см). Иглу, закупорившуюся хлопьями фибрина, прочищают тупоконечным мандреном (зондом). Плевральную полость опорожняют медленно, во избежание отека легких или обморочного состояния. При слабости сердца перед пункцией вводят сердечные средства (кофеин). Удаление всей жидкости (если нет гнойного плеврита) необязательно, а в некоторых случаях даже опасно (остающийся в небольшом количестве экссудат рассасывается).

Прокол живота.

Показания. Необходимость в проколе живота возникает при водянке и перитоните, когда требуется опорожнить брюшную полость или получить ее содержимое с диагностической целью (при коликах и других заболеваниях).

Техника операции. Брюшную стенку прокалывают у стоящих крупных животных и лежащих на боку (с опущенным вниз тазом) мелких. У собак при опорожнении брюшной полости бинтуют полотенцем живот спереди и сзади места прокола. По мере вытекания жидкости бандаж подтягивают, чем добиваются более полного удаления содержимого и предотвращают резкие изменения внутрибрюшного давления. При опорожняющих проколах употребляют тонкий троакар или кровопускательную иглу, при диагностических--обыкновенную инъекционную иглу и шприц.

Места прокола намечают; у собак, кошек и свиней--по белой линии или сбоку от нее на 1--2 см, позади пупка (у самцов впереди пупка); у лошади: а) в левом подвздохе, на середине горизонтальной линии, соединяющей коленную чашку с последним ребром; б) на расстоянии 3--5 см сбоку от белой линии, впереди пупка; в) по белой линии позади пупка (у кобыл); у коров--в правом подвздохе на той же линии, что и у лошади.

После предварительного смещения кожи в сторону в несколько косом направлении вкалывают иглу на глубину 2--4 см. О проникании игле в брюшную полость узнают по отсутствию сопротивления и одновременному истечению жидкости. Последнюю выпускают медленно, наблюдая все время за состоянием сердечной деятельности. При появлении признаков коллапса операцию приостанавливают и вводят подкожно или внутривенно кофеин.

Если жидкость перестает вытекать, иглу смещают в сторону или устраняют препятствие тупым мандреном. Повторный прокол делают в другой точке. Место операции смазывают настойкой иода и покрывают комочком ваты, пропитанной коллодием.

...