Научно-практическое обоснование использования новых пробиотических препаратов в промышленном птицеводстве

Таблица 6 Результаты убоя подопытной птицы

Показатели	Группы
	Контрольная	I опытная	II опытная
Предубойная масса, г Масса потрошенной тушки, г Убойный выход, % Масса съедобных частей, г в т.ч. мышц, г Масса несъедобных частей, г в т.ч. костей, г Отношение съедобных частей к несъедобным Отношение массы мышц к массе костей	1868±22,6 1277,7±18,2 68,4 1092,8 706,1±16,7 775,2 276,5±1,3 1,41 2,55	2006±20,8 1388,1±14,7 69,2 1213,6 800,4±18,9 792,4 284,8±1,7 1,53 2,81	2095±22,5 1462,3±12,8 69,8 1284,2 850,6±21,4 810,8 291,2±2,3 1,58 2,92

Данные анатомической разделки тушек 42 -дневных цыплят-бройлеров показывают, что в организме цыплят под влиянием используемых пробиотиков, помимо количественных изменений, проявившихся в увеличении живой массы, произошли и качественные. По сравнению с контрольными группами во всех опытах выше наблюдалась масса потрошеных тушек, убойный выход на 1,1-2,2%, увеличение массы съедобных частей относительно массы несъедобных частей тушки.

Одним из основных показателей характеризующих мясную продуктивность птицы является отношение массы мышц к массе костей. В наших исследованиях этот показатель выше в опытной группе 1 первого опыта на 9,8%, II опыта - на 5,9%, III опыта - на 10,1%, в опытной группе 2, соответственно на 13,9;7,0;14,56 чем в контроле.

Установлено, что увеличение массы мышц в опытных группах, в большей мере, связано с увеличением массы грудных мышц, отличающихся более высокой биологической полноценностью.

Качественным показателем мяса, в некоторой мере, является его химический состав, который определялся нами в гомогенате съедобных частей потрошенной тушки (таблица 7).

Установлено, что цыплята опытных групп имели в мясе больше сухих веществ, а тем самым больше сырого протеина и жира, чем в контрольных группах.

Расчет на 100 г сухого вещества показал, что увеличение сухих веществ в мясе бройлеров опытных групп в большей мере связано с содержанием протеина, чем жира. Более высокое содержание протеина наблюдалось в группах, где использовался бифитрилак.

Морфологический состав тушек, изученный нами при контрольном убое, согласуется с результатами убоя всего подопытного поголовья.

Таблица 7 Химический состав гомогената съедобных частей потрошеной тушки цыплят-бройлеров, %

Показатель	Группа
	Контрольная	I опытная	II опытная
Вода Сухое вещество В т.ч. сырой протеин сырой жир сырая зола В расчете на 100 г сухого вещества: Протеин Жир Зола	64,2±0,49 35,8±0,50 20,4±0,26 14,2±0,18 1,2±0,12 57,0±0,25 39,66±0,21 3,34±0,16	62,08±0,51* 37,32±0,46* 21,9±0,29* 14,93±0,22 1,09±0,14 57,7±0,14* 39,43±0,17 2,87±0,12	61,95±0,48* 38,05±0,49* 22,3±0,31* 14,67±0,16 1,08±0,17 58,6±0,19* 38,56±0,22 2,84±0,18

*- P> 0.95 **- P>0.99

Из контрольной группы подлежало убою 92 головы, общей живой массой 171,88 кг, что на 9,7% меньше, чем в I опытной группе и на 17% чем во II опытной группе. Выше в опытных группах была и масса потрошеных тушек в I опытной группе на 11%, во II на 19,4%, чем в контроле. Оценка тушек по категориям упитанности показала, что мяса I категории было подготовлено к реализации из птиц II опытной группы 105,52 кг, а из I опытной - 95,41 кг, что больше чем в контрольной группе соответственно на 23,6% и 11,8%. Это, несомненно, сказалось на его реализационной цене.

5. Экономическая эффективность результатов производственной проверки

В наших исследованиях финансовый результат при расчете прибыли выражен через такие технологические показатели: как сохранность птицы, величина прироста живой массы, конверсия корма, стоимость кормов и пробиотических препаратов, количество производимой продукции и ее качество, себестоимость продукции и ее реализационная цена в зависимости от качества.

Экономические расчеты показали, что самая низкая себестоимость 1 кг мяса была получена во II новом варианте 35,12 руб., что на 6,66 руб. ниже, чем в базовом варианте. В первом новом варианте себестоимость была ниже на 4,35 руб.

Использование пробиотических препаратов при промышленном производстве мяса бройлеров экономически выгодно. Прибыль в I новом варианте составила 150,5 тысяч рублей, во II - 180,78 тысяч рублей, что выше, чем при базовом варианте соответственно на 44,7 и 74,9 тысячи рублей. Экономический эффект от использования пробиотика лактобактерина в расчете на 1000 голов составил 8948 рублей, а от использования бифитрилака - 14982 рубля.

6. Жизнеспособность и резистентность индюшат кросса БИГ-6 при использовании биологически активных добавок «Лактофлэкс» и «Лактофит»

Промышленные способы содержания и селекционные приемы привели к существенным анатомо-физиологическим изменениям индеек. Многократно увеличилась масса тела, значительно развились грудные мышцы, изменились пропорции.

Доказано, что интенсивная технология выращивания птицы искажает процессы формирования кишечного микробиотопа у суточного молодняка. В отличие от домашних сородичей у индюшат промышленного стада существенно снижен общий индекс кишечной микрофлоры.

Дисбактериоз кишечника замыкает патогенетический порочный круг, разорвать который необходимо как для успешной профилактики основного заболевания, так и для ликвидации его последствий.

В связи с этим целью данного раздела являлось изучить влияние биологически активных добавок «Лактофлэкс» и «Лактофит» на состояние неспецифической резистентности, жизнеспособность, рост и развитие индюшат при повышенной технологии их выращивания.

В соответствии с поставленной целью опыт проводился в цехе выращивания индюшат на участке подращивания №1 промышленного комплекса по производству индейки «Евродон».

Индейки отличается от других сельскохозяйственных животных строением пищеварительной системы, большой интенсивность обменных процессов, что связано с высокой скоростью роста молодняка. Достаточно сказать, что масса 6-недельного индюшонка кросса БИГ-6 почти в 40 раз превышает массу суточного, а в убойном возрасте в 270 раз у самцов и в 145 раз у самок.

Во время эмбрионального развития питательные вещества, поступающие от материнского организма, полностью доступны. Основным источником энергии в этот период являются липиды, тогда как после вывода-углеводы. Поэтому начало потребления корма всегда связано со становлением ряда функций пищеварения.

Используемые нами добавки содержат сбалансированный набор лактулозы, лактозы, галактозы и других углеводов, что дает возможность нивелировать этот стресс. Входящие в состав углеводы способствуют улучшению пищеварения за счет стимуляции роста бифидо- и лактофлоры.

В наших исследованиях установлено, что при использовании лактофлэкса и лактофита микробный баланс сдвигается в сторону бифидобактерий и молочнокислых бактерий.

Так, количество молочнокислых бактерий уже к 14 дням в первой и во второй группах, составило 7,44 - 7,08 lg КОЕ/г, а бифидобактерий 6,78-6,50 lg КОЕ/г, что в 2,07-1,97 и 2,31-2,22 раза больше, чем в контрольной группе соответственно. В контрольной группе наблюдалось высокое содержание бактерий группы кишечной палочки (БГКП) - 7,96 lg КОЕ/г, что выше чем в опытных группах в 1,94-1,77 раза.

К 42-дневному возрасту наблюдалось общее количественное увеличение микроорганизмов во всех группах, хотя разница между группами по количеству лакто и бифидобактерий снизилась, что свидетельствует о том, что к 42 дневному возрасту система пищеварения и в контрольной группе готова к нормальному перевариванию и всасыванию питательных веществ.

Однако, в течение всего периода выращивания индюшат, в опытных группах наблюдалось большее количество полезной микрофлоры и ниже бактерий E. Coli, стафилококков и энтерококков, что несомненно отразилось на сохранности и естественной резистентности индюшат.

Сохранность индюшат в контрольной группе составила 92%, что на 6% ниже, чем в I опытной группе и на 4% чем во II опытной группе. Падеж в контрольной группе наблюдался до 37 дневного возраста, тогда как в опытных группах только до 7-8 дневного возраста. Основной причиной падежа является колибактериоз (3 головы из 4).

Для определения влияния лактофлэкса и лактофита на состояние неспецифической резистентности организма индюшат мы изучали морфологический состав крови.

Гематологические показатели показали, что под влиянием биологически активных веществ улучшаются окислительные свойства крови. Содержание эритроцитов и гемоглобина в крови опытных групп в двухнедельном возрасте имело тенденцию повышения относительно своих контрольных аналогов (Р‹0,95) в шестинедельном возрасте разница по содержанию этих показателей была достоверна выше: эритроцитов в первой группе на 26,4 %, во второй на 25,5 (Р›0,95),а гемоглобина соответственно на 9,7 и 7,6% (Р›0,95).

Использование лактофлэкса и лактофита способствовало повышению естественной резистентности индюшат, о чем свидетельствуют показатели БАСК и ЛАСК. В течение всего периода у индюшат в 2-х недельном возрасте ЛАСК была выше в перовой группе на 30,8, во второй на 24,5%, БАСК, соответственно на 29,0 и 27,8%. В шести недельном возрасте ЛАСК в первой группе на 27,6%, во второй на 26,1%, БАСК соответственно на 32,3% и 29,5%.

Низкие показатели лизоцимной и бактерицидной активности сыворотки крови в первые две недели выращивания индюшат во всех группах связаны с особенностью их роста и развития. Высокая интенсивность роста совпадает с началом первой ювенальной линьки. К двух недельному возрасту пушек заменяется перьями на спине, боках и туловище, а в трех недельном начинают появляется хвостовые перья. В пяти недельном возрасте у индюшат начинают вырастать на голове красные кожистые бородавки - кораллы. Эти периоды роста для индюшат являются критическими. В это время за индюшатами необходим более тщательный уход и сбалансированное кормление. Используемые биологически активные добавки помогают повысить естественную резистентность индюшат в эти напряженные периоды их роста и развития.

Количество лейкоцитов в крови индюшат всех групп находилось в пределах физиологической нормы. Более высокое содержание лейкоцитов в опытных группах является показателем высокой иммунологической реактивности птицы.

Нами также отмечены благоприятные сдвиги обмена веществ у индюшат под воздействием биологически активных веществ, о которых мы судим по концентрации общего белка и его фракций в сыворотки крови. Концентрация общего белка, в опытных группах выше, чем в контрольной, что дает нам возможность заключить, что добавка лактофлэкса и лактофита в рационы индюшат способствует синтезу белка и он может быть использован на прирост живой массы.

Количество альбуминов в сыворотке крови всех групп находилось практически на одном уровне, в относительных величинах разницы поэтому показателю между группами нами не установлено. Однако, следует отметить, что альбумин-глобулиновый коэффициент (А/Г), отражающий белоксинтезирующие процессы в организме птицы наблюдается более высоким в 6 недельном возрасте, что свидетельствует о повышении анаболических процессов в организме индюшат.

Разница по содержанию глобулинов в сыворотке крови индюшат в течение всего периода выращивания нами не установлено. Однако, следует отметить, что достоверно выше в обеих опытных группах и в двух и в шести недельном возрасте наблюдалось более высокое содержание г-глобулинов.

Как известно, г-глобулины составляют основу неспецифического гуморального иммунитета, а местом биосинтеза для них является образования лимфоидной ткани. Повышение г-глобулиновой фракции в крови индюшат опытных групп, видимо связано с биологическими свойствами апробированных нами добавок.

Нормализация физиологических процессов в организме индюшат под влиянием испытуемых биологически активных добавок отразилось на их росте и развитии.

Таблица 8 Динамика живой массы, г

Возраст индюшат, дней	Группы
	Контрольная	1 опытная	2 опытная
	M±m	M±m	M±m
1 7 14 21 28 35 42	55,2±0,2 124,5±2,5 301,8±3,2 661,9±9,5 1077,8±8,4 1480,5±10,2 1998,0±17,2	55,4±0,4 135,2±1,2* 335,5±2,7* 716,6±7,2* 1161,4±5,2** 1699,2±8,2** 2278,4±12,1**	55,2±0,3 134,3±2.3 229,8±5,7* 715,4±8,3* 1146,7±9,3* 1660,8±9.8** 2202,5±13.7**

Примечание:^* - Р>0,95, ** - P>0,99

Контрольное взвешивание индюшат проводилось еженедельно с суточного до 42 дневного возраста. В результате проведенных исследований установлено позитивное влияние лактофлэкса и лактофита на интенсивность роста индюшат. Полученные нами показатели свидетельствуют, что уже в 7-дневном возрасте живая масса в первой группе была на 8,6%, а во второй на 7,9% выше чем в контрольной группе. Достоверна эта разница была и во все возрастные периоды. К концу выращивания индюшата первой опытной группы превосходили своих сверстников на 280,4 г, а во второй опытной группе на 204,5 г (P>0.99).

Важным экономическим показателем, оказывающим влияние на себестоимость продукции, является расход кормов. На основании учета расхода кормов и полученных приростов, нами рассчитаны затраты кормов на 1 кг прироста.

Установлено, что в целом по группам разница, по расходу кормов была незначительной, однако затраты кормов на 1кг прироста оказались ниже в опытных группах, что связано с лучшей переваримостью кормов под воздействием лактофлэкса и лактофита. Снижение конверсии корма в опытных группах наблюдалось уже в первую фазу выращивания (0-3 недели на 11,1%), но особенно высокими затраты кормов были во вторую фазу выращивания индюшат в контрольной группе по сравнению с первой группой на 21%, а со второй на 13,9%.

Основываясь на показателях прироста живой массы, сохранности индюшат и производственных затратах на получение продукции, нами по итогам проводимого опыта рассчитана экономическая эффективность использования биологически активных добавок лактофлэкса и лактофита индюшатам кросса БИГ-6.

В ценах на 1 января 2009 года 1 литр биологически активных добавок стоил 150 рублей. Цена лактофлэкса и лактофита была одинаковой. В ценах на этот период мы и провели все расчеты по научно-производственному опыту.

Экономические расчеты показали, что использование биологически активных добавок способствовало снижению себестоимости прироста в обеих опытных группах.

Однако, самая низкая себестоимость 1 кг прироста была получена при использовании лактофлэкса - 47,5 рублей, что на 9,4 рубля ниже, чем в контрольной группе. Во второй группе себестоимость была ниже на 7,0 рублей.

Применение пребиотиков (биологически активных добавок) при промышленном производстве мяса индеек экономически выгодно. При выращивании 50 голов индюшат с использованием лактофлэкса было получено прибыли 2935 рублей, лактофита - 2532,5 рублей, что выше чем в контрольной группе на 1367,5 рублей и на 965,5 рублей соответственно.

Уровень рентабельности выращивания по контрольной группе составил 30,8%, что ниже, чем в первой опытной группе на 25,9%, во второй - на 18,5%.

Следовательно, для повышения экономической эффективности при промышленной технологии выращивания индюшат следует выпаивать им лактофлэкс и лактофит в дозе 0,2 г. на 1 кг живой массы. При этом экономический эффект в расчете на 1000 голов составит от использования лактофлэкса 27360 рублей, а от использования лактофита 19310 руб.

7. Влияние пробиотиков на жизнеспособность, продуктивность и воспроизводительные способности кур родительского стада кросса «Хайсекс Коричневый»

Большинство птицефабрик яичного направления в нашей стране выполняет частичную функцию племрепродукторов, имеют в общей схеме производства яиц родительское стадо. Назначение родительского стада производства инкубационных яиц.

Целью этого раздела является: «Изучить влияние пробиотика бифитрилак на яйценоскость, жизнеспособность и воспроизводительные качества кур несушек родительского стада кросса «Хайсекс коричневый». Экспериментальная часть исследований проводилась на птицефабрике «Белокалитвенская» Ростовской области.

Для опыта было выделено 2 группы кур. В контрольной группе использовался основной рацион, в опытной к основному рациону добавлялся пробиотический препарат бифитрилак из расчета в возрасте 18-19 недель - 4 г на 100 голов, один раз в сутки в течение 2-х недель, в 32-33 недели (начало пика продуктивности) 5 г на 100 голов, один раз в сутки в течение 2-х недель, в 55-56 недель (при естественном снижении яйценоскости, с целью ее продления) - 5 г на 100 голов в течение 2-х недель.

Использование бифитрилака оказало положительное влияние на жизнеспособность и яичную продуктивность кур-несушек. За период опыта сохранность составила 95,4%, против 92,3% в контрольной группе. Отрадно заметить, что процент сохранности оставался высоким в опытной группе до конца опыта, что свидетельствует о возможности продолжения срока использования кур (таблица 9).

Таблица 9 Жизнеспособность и яичная продуктивность подопытных кур родительского стада.

Показатель	Группы
	I контрольная	II опытная
Сохранность, % Яйценоскость, шт: на 1 среднегодовую несушку на 1 начальную несушку масса яиц, г возраст, дней: достижения 50% яйцекладки наступления пика яйцекладки интенсивность яйцекладки, % в период пика (максимальная) к концу яйцекладки в среднем за продуктивный период (52 нед) выход инкубационных яиц с 26-70 недель, %	92,3 277,3 266,5 58,7±0,45 152 227 92,1 63,1 75,97 88,4	95,4 291,4 284,4 60,5±0,9 143 189 93,1 67,9 79,8 93,5

Использование бифитрилака ускорило наступление половой зрелости на 9 дней, а пика яйцекладки более, чем на месяц, к тому же яйценоскость на уровне пика (92,8%) в опытной группе наблюдалась в течение 15 недель тогда, как в контрольной группе до 6 недель. В среднем на 1 курицу несушку было получено 291,4 яйца, что выше, чем в контрольной группе на 14 яиц.

Во все возрастные периоды выход инкубационных яиц был выше на 3,5-5,0% во второй опытной группе, где использовался бифитрилак.

Использование пробиотика бифитрилак повысило качественные показатели яиц, так в желтке яиц содержалось больше на 4,4 % протеина, и на 2,5% жира , на 14,5% витамина А, на 15,5% витамина В₂. В белке яиц наблюдалось выше содержание протеина на 9,7%, витамина В₂ на 13,5%, а витамина В₄ на 8,6%.

Критериями оценки резистентности организма птицы в нашем эксперименте являлись морфологические и биохимические показатели крови (таблица 10).

Таблица10 Морфологические и биохимические показатели крови подопытных кур родительского стада

Показатель	25 недель	42 недели
	контрольная	опытная	контрольная	опытная
Гемоглобин, г/л	88,0±1,6	101,2±1,2	98,0±0,91	115,0±1,13
Эритроциты, 1012/л	2,83±0,16	3,24±0,21	3,04±0,07	3,55±0,11
Лейкоциты, 109/л	29,5±0,88	30,16±0,93	29,7±0,86	30,95±0,92
Общий белок, г/л	48,7±1,4	52,1±1,21	53,5±1,17	57,8±1,19
Альбумины: г/л	18,1±0,57	20,5±0,48	21,45±0,53	25,37±0,49
%	37,2	39,4	40,1	43,9
Глобулины: г/л	30,6±0,52	31,6±0,31	32,05±0,36	32,43±0,42
%	62,8	60,6	59,9	56,1
в т.ч.б	20,4±0,33	18,3±0,28	20,0±0,36	16,4±0,24
в	19,0±0,29	18,0±0,17	18,9±0,21	14,6±0,27
г	23,4±0,21	24,3±0,19	21,0±0,31	25,1±0,49
Коэффициент А/Г	0,59	0,65	0,67	0,78
ЛАСК, %	23,54±1,24	28,24±0,77	25,69±1,11	31,4±0,9
БАСК, %	44,4±1,07	48,9±0,78	46,7±1,18	54,5±1,21

В результате наших исследований установлено, что содержание общего белка в сыворотке крови подопытных кур колебалось в пределах 48,7 - 57,8 г/л. По этому показателю наблюдается изменение общего белка сыворотки крови в возрастном аспекте.

Концентрация общего белка в опытной группе выше, чем в контрольной на 7-8%, что дает нам возможность предположить, что рационы с добавкой пробиотика бифитрилак способствует синтезу белка, и он может быть использован на производство яиц. Это подтверждено нашими исследованиями. В белке и желтке яиц, полученных от кур опытной группы, наблюдалось более высокое содержание протеина.

Количество глобулинов закономерно выше, чем альбуминов на 19-22%. Большая роль в иммунном статусе организма птицы отводится г-глобулинам в плазме крови. Полученные данные свидетельствуют о положительном влияние пробиотиков на этот показатель. Так в опытной группе отмечено увеличение (в 26-недельном возрасте на 3,8%, 42-недельном на 19,5%) г-глобулиновой фракции, что является показателем повышения естественной резистентности организма птицы.

Использование бифитрилака в опытной группе способствовало повышению естественной резистентности кур, о чем свидетельствуют показатели бактерицидной активности крови (БАСК) и активность лизоцима (ЛАСК). В течение всего периода использования ЛАСК была на 19,9-22,2%, а БАСК на 10,1-16,7% выше чем в контрольной группе.

Высокий уровень естественной резистентности и иммунологической реактивности организма кур при использовании пробиотика бифитрилак во многом предопределяет жизнеспособность, яйценоскость и воспроизводительные качества птицы.

Показателями воспроизводительных способностей петухов являются качество спермопродукции и половая активность.

В течение всего периода использования качественные показатели спермы петухов (объем эякулята, подвижность спермиев и концентрация) были достоверно выше в опытной группе (p>0.95), что положительно сказалось на оплодотворенности и выводимости яиц (таблица 11).

Таблица 11 Результаты инкубации яиц полученных от подопытного поголовья кур, %

Показатель	Группы
	I контрольная	II опытная
Выход инкубационных яиц	88,4	93,5
Оплодотворенность яиц	90,0	91,9
Отходы инкубации, итого:	18,7	14,84
в т.ч. неоплодотворенные яйца	10,0	8,1
«кровяное-кольцо»	2,58	1,90
замершие эмбрионы	2,90	2,26
задохлики	3,22	2,58
Выведено молодняка, гол
Вывод цыплят	81,2	85,2
Выводимость, яиц	90,3	92,6

Более высокие воспроизводительные качества имели куры опытной группы. В этой группе оплодотворенность яиц была выше на 1,9%, выводимость на 2,3%, вывод молодняка на 4%.

Целым рядом экспериментальных работ установлено, что жизнеспособность взрослой птицы во многом определяется (при прочих равных условиях) интенсивностью ее эмбрионального развития. Наиболее важным критерием оценки последней считают выводимость яиц (как показатель всей партии вылупившегося молодняка), массу суточного молодняка (как показатель индивидуальной жизнеспособности) и продолжительность эмбрионального развития. Он, по-видимому, является с точки зрения рассматриваемой проблемы, наиболее важным, так как является показателем энергии роста вылупившихся цыплят.

Продолжительность эмбрионального развития (ПЭР) нами разделена на 2 периода: I - 480-492 часа, II - 493-504 часа. Замечено, что цыплята, полученные из яиц кур, имеющих высокие показатели естественной резистентности (опытная группа), отличались повышенной интенсивностью эмбрионального роста, о чем свидетельствует продолжительность эмбрионального развития.

В наших исследованиях продолжительность эмбрионального развития была короче в опытной группе, в которой 83% цыплят вывелось в I период, тогда как в контрольной группе в I период цыплят вывелось на 15,5% меньше.

К центральным (первичным) лимфоидным органам птиц относят эмбриональный желточный мешок, костный мозг, тимус и фабрициеву сумку.

Для наших исследований мы выбрали желточный мешок, тимус и фабрициеву сумку как индикаторы состояния иммунной системы птиц в эмбриональный период при использовании пробиотиков в кормлении родительского стада кур (таблица 12).

Таблица 12 Интерьерные показатели суточного молодняка

Показатель	Контрольная	Опытная
	I ПЭР, час 480-492	II ПЭР, час 493-504	I ПЭР, час 480-492	II ПЭР, час 493-504
Живая масса, г	39,6±0,18	39,4±0,05	40,8±0,12	39,7±0,2
Масса: без остаточного желтка, г	34,0±0,35	33,4±0,13	36,2±0,38	34,26±0,14
%	85,8	84,7	88,7	86,2
остаточного желтка с желточным мешком, г	5,6±0,2	6,46±0,18	4,57±0,13*	5,44±0,12
%	14,1	16,2	11,2	13,7
фабрициевой сумки, г	0,047±0,007	0,015±0,001	0,064±0,01	0,02±0,002
%	0,12	0,089	0,16	0,091
тимуса, г	0,15±0,01	0,10±0,001	0,24±0,02	0,095±0,002
%	0,39	0,26	0,58	0,24

При введении в рацион кур родительского стада бифитрилака изменяется процентное отношение органов иммунитета к массе тела суточного молодняка.

В наших исследованиях высокий процент использования желтка наблюдался в опытной группе. В этой группе при I периоде эмбрионального развития процент остаточного желтка составил 11,2%, тогда как в контрольной группе этот показатель составил 14,1-16,2%.

Выше в опытной группе была масса цыпленка без остаточного желтка, что свидетельствует о лучшем использовании питательных веществ желтка для повышения энергии роста цыпленка. Итак, масса остаточного желтка с желточным мешком в суточном возрасте в опытной группе была ниже, чем в контрольной на 25,8-18,2%, а масса фабрициевой сумки и тимуса наоборот была выше в опытной группе на 33,3%, 48,7% соответственно.

Однако основной целью нашей работы являлось установить влияние родительского стада на эмбриональное и постэмбриональное развитие потомства на фоне использования в рационах кормления кур и петухов пробиотического препарата бифитрилак.

Под воздействием пробиотиков в опытной группе повысилась интенсивность роста цыплят в эмбриональный и постэмбриональный периоды, о чем свидетельствуют показатели живой массы. Живая масса в суточном и в 4-х недельном возрасте достоверно выше в опытной группе. Среднесуточный прирост за этот период в опытной группе был выше на 6,6% при раннем ПЭР и на 9,8% при позднем периоде эмбрионального развития.

Цыплята в опытной группе отличались и более высокой естественной резистентностью, о которой мы судили на основании показателей лизоцимной и бактерицидной активности сыворотки крови. В наших исследованиях ЛАСК была выше в опытной группе на 6,2-6,8%, а БАСК на 9,2-10,3%, чем в контрольной группе, что несомненно отразилось на жизнеспособности цыплят, в среднем сохранность в опытной группе была выше чем в контрольной на 3%. Особенно низкая сохранность наблюдалась в контрольной группе при II периоде (позднем) эмбрионального развития, в этой группе были самые низкие показатели ЛАСК и БАСК.

Анализ естественной резистентности потомства, полученного от родителей с разным ее уровнем показывает нам о возможности контроля этих показателей у исходных форм, т.е. молодняк для дальнейшего использования отбирать от высокопродуктивных родителей.

Генетически обусловленная взаимосвязь продолжительности эмбрионального развития птицы с резистентностью и их положительное влияние на продуктивные качества потомства, наряду с существующими методами, позволяют широко использовать эти показатели для контроля сочетаемости исходных родительских форм.

8. Влияние пробиотиков лактобактерин и бифитрилак на жизнеспособность, рост и развитие молодняка

Качество ремонтного молодняка определяет основные показатели будущей продуктивности и жизнеспособности птицы комплектуемого стада и характеризуется физиологической подготовленностью курочек к продуктивному периоду.

В результате проведенных исследований установлено, что использование пробиотиков способствовало повышению жизнеспособности цыплят.

Сохранность молодняка в контрольной группе составила 94,1, что ниже, чем в опытных группах на 0,8-0,9%, меньше в опытных группах было и зоотехнического брака. Деловой выход молодок в I-контрольной группе составил 84,2, во II опытной - 85,3%, в III 85,6%. В цех промышленного стада было передано со II группы 14843 головы, c Ш группы - 14886 голов, что на 192 и 235 голов больше чем из контрольной группы.

Ремонтный молодняк в опытных группах отличался более высокой интенсивностью роста, о чем свидетельствуют показатели живой массы. В течение всего периода выращивания живая масса во II и III опытных группах была достоверно выше, чем в контрольной (таблица 13).

Таблица 13 Динамика живой массы молодняка (n = 100), г

Возраст птицы, недель	Группы, М±m
	контрольная	2	3
1 7 14 20	60,7±1,1 521,3±5,3 1119,1±17,1 1744,1±21,7	66,2±1,2 536±4,5 1293±19,4 1752±20,1	65,7±1,5 548±5,7 1311±18,5 1791±19,5

По нашему мнению, наилучший результат был обеспечен за счет оптимального сочетания принятой технологии и развитию физиологических способностей скороспелого кросса под воздействием пробиотиков. Учитывая оптимальные показатели живой массы в опытных группах, мы форсирование яйцекладки начали с 14-недельного возраста, а не с 17-недельного принятого в хозяйстве и в контрольной группе.

Этот прием не оказал отрицательного влияние ни на сохранность, ни на рост и развитие молодняка и последующую яичную продуктивность кур-несушек.

Используя пробиотики в процессе выращивания ремонтного молодняка, учитывая его физилогические и адаптационные возможности, мы сочли необходимым применить форсирование яйцекладки у цыплят опытных групп с 14-недельного возраста, что позволяет сократить срок выращивания ремонтного молодняка, и повышая при этом эффективность его использования.

9. Влияние пробиотиков лактобактерин и бифитрилак на продуктивность и физиологическое состояние кур-несушек промышленного стада

Основной целью представленных в этом разделе исследований являлось изучить влияние пробиотиков лактобактерин и бифитрилак на продуктивность и физиологическое состояние кур-несушек промышленного стада.

Хорошие результаты были получены по жизнеспособности кур-несушек. За период проведения исследований во второй группе сохранность находилась на уровне 96%; в третьей 96,4%, что выше чем в контрольной на 4-4,4%.

Валовое производство пищевых яиц за 52 недели продуктивного периода во второй (опытной) группе составило 151293 шт., что на 7,6% или 10749 шт. яиц больше; в третьей (опытной) группе - 152966 шт., что на 8,8% или 12422 шт. яиц больше, чем в первой (контрольной) группе.

В опытных группах мы отметили быстрое нарастание яйценоскости и последующее ее поддержание на высоком уровне в течение всего опытного периода. Наиболее показательно данная тенденция прослеживалась в третьей опытной группе, где использовался бифитрилак. Высокий уровень яйценоскости кур в конце продуктивного периода свидетельствует о возможности продления эксплуатации кур-несушек.

Во второй группе в расчете на среднюю несушку было получено на 14,8 яиц (312,6 шт.); в третьей группе - на 17,6 яиц (315,4 шт.) больше, чем в первой группе (297,8 шт.). В расчете на начальную несушку куры опытных групп превосходили контрольных соответственно на 21,5; 24,8 яиц.

Интенсивность яйценоскости в первой группе была 81,5; во второй группе - 85,6; в третьей группе - 86,3%.

Анализируя полученные результаты мы установили, что куры-несушки опытных групп более способны к поддержанию высокой яйценоскости после достижения её пика. Использование пробиотиков способствовало интенсивному нарастанию яйценоскости в начальный период продуктивности, более раннему достижению её пика. Биологическая природа этого показателя связана с высокой мобилизацией всех систем и органов птицы, а также с наличием в организме легко используемого запаса питательных веществ.

Увеличение таких показателей, как выход яиц на начальную и среднюю несушку, интенсивность яйценоскости, в наших исследованиях, обусловлены повышением валового производства пищевых яиц и снижением уровня падежа и зоотехнического брака в опытных группах.

В наших исследованиях, мы проводили оценку яйценоскости кур-несушек не только по яйценоскости за определенный период, но и по компонентам яйценоскости (возраст снесения первого яйца, достижения пика и другие).

Возраст снесения первого яйца в первой (контрольной) группе составил 136 дней; во второй (опытной) группе - 130 дней; в третьей (опытной) группе - 128 дней, что соответственно на 6 и 8 дней раньше, чем в контроле.

Возраст достижения 50%- ной яйценоскости во второй группе, наступил в 146 дней; в третьей группе - 143 дня, тогда как в первой группе - 155 дней, что соответственно на 9 и 12 дней раньше.

Возраст достижения пика яйцекладки (свыше 90%) в контрольной группе составил 178 дней; во второй (опытной) группе - 161 день; в третьей (опытной) группе - 158 дней, что соответственно на 17 и 20 дней раньше.

По выходу яичной массы в расчете на среднюю несушку лучшие результаты были получены в опытных группах. Например, во второй группе значение этого показателя равнялось 19,29 и в третьей группе - 19,62 кг, что соответственно превысило показатель в первой группе (17,99 кг) - 1,30 и 1,63 кг.

Выход яичной массы на начальную несушку в первой группе составил 16,98; во второй группе - 18,67; в третьей группе - 19,03 кг, что соответственно выше, чем в контроле на 1,69 и 2,05 кг.

Увеличение этих показателей в опытных группах, мы связываем с повышением яйценоскости и средней массы яиц, что обусловлено разносторонним влиянием на организм кур-несушек пробиотиков.

Обогащение комбикормов пробиотиками обусловило меньшее потребление корма. Экономия корма за 52 недели опытного периода составила в среднем 2338 г/гол по сравнению с контролем. Эти показатели свидетельствуют о лучшей переваримости кормов под воздействием пробиотиков.

Затраты корма на 10 яиц и 1 кг яичной массы во второй группе составили соответственно 1,36 и 2,21 кг, что на 9,3 и 11,2% ниже, чем в первой группе. Затраты корма на 10 яиц и 1 кг яичной массы в третьей группе были соответственно 1,33 и 2,15 кг, что на 11,3 и 13,7% меньше, чем в контрольной группе.

Следует отметить, что куры-несушки третьей группы, в которой мы использовали бифитрилак, были более спокойные, менее пугливые, мало подвержены стрессам, не было случаев травм и расклева. Эти данные согласуются с полученными нами показателями по жизнеспособности, интенсивности роста и яйценоскости кур в этой группе.

Следует отметить, что использование пробиотиков понизило расход кормов на производство продукции, что связано с улучшении преваримости кормов под их воздействием.

В переваримости кормов, кроме ферментов пищеварительной системы сельскохозяйственной птицы, также принимает участие ферменты, выделяемые в просвет желудочно-кишечного тракта микрофлорой кишечника. В связи с этим нами изучалось влияние пробиотических препаратов на состав микрофлоры желудочно-кишечного тракта кур-несушек. Количество и состав микроорганизмов учитывались нами у кур-несушек 47-недельного возраста, через неделю после очередной смены рациона.

Анализ проведенных исследований показал, что под влиянием пробиотических препаратов лактобактерин и бифитрилак изменился количественный и качественный состав микрофлоры кишечника (таблица 14).

Так, в контрольной группе наблюдалось высокое содержание бактерий группы E. Coli (6.94 lgKOE/г), энтерококков (6,05 lgKOE/г), и низкое содержание молочно-кислых (3,84 lgKOE/г) и бифидобактерий (3,8 lgKOE/г).

Использование пробиотика лактобактерин (II опытная группа) понизило количество энтерококков на 24%, стафилококков на 38%, бактерий группы E. Coli на 21,9% и увеличило количество лактобактерий на 64,9%, а бифидобактерий на 38,5%.

Значимые изменения наблюдались в микрофлоре кишечника кур-несушек в III опытной группе. Под воздействием бифитрилака количество бифидобактерий в толстом отделе кишечника увеличилось 62,2 раза, молочно-кислых бактерий в 1,82 раза, в 1,6 раза снизилось бактерий группы E. Coli и в 1,62 раза стафилококков.

Таблица 14 Количество кишечной микрофлоры и величина рН содержимого железистого желудка и тонкого отдела кишечника кур-несушек

Показатель	Группа
	I контрольная	II опытная	III опытная
Микроорганизмы; lgKOE/г энтерококки	6,05±0,21	4,87±0,26	3,98±0,28
стафилококки	2,55±0,12	1,84±0,11	1,18±0,15
дрожжи	3,48±0,19	2,68±0,8	1,74±0,17
БГКП	6,94±0,22	5,69±0,25	4,24±0,31
молочнокислые бактерии	3,85±0,14	6,35±0,21	7,02±0,22
бифидобактерии	3,84±0,37	5,32±0,29	8,55±0,28
РН содержимого железистого желудка	4,98±0,12	4,12±0,14	3,96±0,18
РН химуса тонкого отдела кишечника	6,55±0,17	6,21±0,18	6,12±0,21

Следует отметить, что в контрольной группе в структуре E. Coli при посеве на 5%-ный кровяной агар были выделены гемолитические штаммы, способные вызывать заболевания желудочно-кишечного тракта, были выделены некоторые виды гнилостной микрофлоры (протей).

Из содержимого толстого отдела кишечника кур-несушек опытных групп мы не выделили гемолитических штаммов E. coli и Proteus vulgaris. Полученные в результате исследований данные подтверждают сведения о том, что пробиотики адгезируют на своей поверхности патогенную микрофлору и выводят ее из организма, ослабляют в кишечнике гнилостные процессы и способствуют формированию нормального микробиоценоза. Кроме того, известно, что большинство патогенных микроорганизмов развивается при рН 6,8 - 8,0, а в наших исследованиях величина рН железистого желудка 4,12±0,14 во II опытной группе, и 3,96±0,18 в III опытной группе, а в контрольной группе - 4,98±0,12, что свидетельствует о том, что под влиянием пробиотиков рН содержимого остается на более кислом уровне, что создает оптимальные условия для работы ферментов и подавляет развитие патогенной микрофлоры. рН химуса тонкого отдела кишечника во всех группах была слабокислой и составила в контрольной группе 6,55, во II опытной группе 6,21 и в III опытной группе 6,12. Известно, что оптимальное значение химуса для работы ферментной системы в тонком отделе кишечника имеет от слабокислой до слабощелочной реакции. Таким образом, можно высказать предположение что под влиянием пробиотиков в желудочно-кишечном тракте нормализуется реакция его содержимого и активизируется действие ферментных систем, что обеспечивает лучшее переваривание питательных веществ корма.

В заключение данного раздела, хотелось отметить, что полученные нами данные подтверждают сведения о том, что пробиотики, нормализуют процессы пищеварения, клиническое состояние и продуктивность птицы. За счет оптимизации реакции содержимого желудочно-кишечного тракта, и оптимального содержания в кишечнике кур полезной микрофлоры, происходит улучшение процессов переваривания (полостное пищеварение) и всасывания питательных веществ, что в конечном итоге обусловливает более высокий уровень продуктивности. Так, наибольшая яйценоскость и лучшие показатели качества пищевых яиц мы наблюдали у птицы, получавшей пробиотический препарат бифитрилак.

В результате проведенных исследований выявлено, что наибольшее повышение яйценоскости, улучшение качественных показателей пищевых яиц и лучшее клинико-физиологическое состояние кур-несушек из всех изученных вариантов отмечено при использовании, пробиотического препарата бифитрилак который нами взят в новом варианте.

В базовом варианте пробиотики не использовались. Подопытная птица обеих групп содержалась в одном помещении, с соблюдением всех технологических параметров содержания и кормления птицы. В каждую группу было отобрано по 7000 голов одновозрастной птицы

Результаты производственного опыта подтвердили данные, полученные в результате научно-производственных опытов.

Нами отмечено, что при использовании пробиотического препарата бифитрилак, увеличилась сохранность кур-несушек на 3,4%; валовое производство яиц выросло на 8,2%, в новом варианте было получено на 93,4 тыс. шт. яиц больше; экономия корма составила 100 ц., или 5,5%, а затраты корма на получение 1000 яиц сократились на 21 кг или 12,4%. В опытном варианте себестоимость 1000 яиц снизилась на 8,7%, а уровень рентабельности производства яиц составил 31,0%, тогда как в базовом варианте всего 19,5%. Экономический эффект при применении нового варианта составил 201тыс. рублей.

Таким образом, результаты производственной проверки показали, что для дальнейшей интенсификации и наращивания объемов производства пищевых яиц целесообразно применять пробиотический препарат бифитрилак. При этом уровень рентабельности яичного птицеводства можно повысить на 11,5%. Учитывая тот факт, что по данным Росптицесоюза уровень рентабельности яичных птицефабрик в Российской Федерации составляет 11 - 20%, предложенный в наших исследованиях вариант позволит улучшить экономические показатели при производстве пищевых яиц.

10. РНГА - как биотест естественной резистентности птиц

Одним из сложнейших вопросов охраны здоровья птиц и эффективности препаратов, повышающих их продуктивность, является определения резистентности организма. В последние десятилетия в этом направлении биотехнология демонстрирует свои возможности. Наряду с клиническими, биохимическими и хозяйственно полезными показателями, биотестирование позволяет прогнозировать интегральное воздействие изучаемых препаратов на живые организмы, поскольку реакция биологической тест-системы зависит не только от отдельных соединений, но и от их взаимодействий между ними. Несмотря на то, что в рассматриваемой области накоплен богатый фактический материал, в биологической науке до сих пор отсутствует единая концепция определения основных используемых терминов, точных и исчерпывающих формулировок, не сформулированы принципы выбора тест-организмов, не выявлены закономерности тест-реакций в тест-ситемах. Недостаточность теоретического описания биотестирования, как метода научного исследования, влечет за собой разнообразные проблемы в практическом воплощении конкретных методик.

Нами в 2008 году проведены исследования в производственных условиях птицефабрики «Белокалитвенская» Ростовской области по использованию РНГА на курах родительского и промышленного стада.

Активность ЭМГА проверяли на парных сыворотках крови, полученных от кур двух групп из хозяйства, где птица была инфицирована М. галлисептикум, но где клинических и патологоанатомических признаков микоплазмоза не наблюдали. Одни птицы (экспериментальный вариант - 100 голов) получали с кормом бифитрилак по ранее установленной схеме, а другим, контрольным (100 голов), - плацебо. Через две недели от подопытных и контрольных птиц взяли пробы крови, которые исследовали в РНГА. Сыворотки крови от птиц подопытной группы в 75% случаев не реагировали с ЭМГА, а остальные реагировали в титре не выше 1:32. Средний геометрический титр антител составил 1:12,5. Сыворотки крови от птиц контрольной группы реагировали в 94% случаев со средним геометрическим титром антител 1:27,6.

Исследования влияния бифитрилака на птиц по содержанию антител в сыворотках крови кур к микоплазмам в постоянно наблюдаемом неблагополучном по РМ хозяйствах показали, что среди цыплят в хозяйстве яичного направления птица микоплазмы быстро распространяются среди цыплят, начиная с 30 дневного возраста, о чем свидетельствует увеличение за две недели количества реагирующих от единиц до 70%. Но, если в группах выращивания, где применяли бифитрилак средний геометрический титр антител составил 11,5, то в контрольных интактных группах - 21,9.

У инфицированных кур родительского стада количество реагирующих приближается к 100%. Это указывает на то, что взрослые птицы остаются носителями возбудителя и могут являться источником распространения инфекции, но не болеть.

Сходные данные были получены в хозяйстве мясного направления. Следует отметить, что при клеточном выращивании бройлеров распространения микоплазм мы не наблюдали. Поэтому наши данные являются результатом обследований бройлеров с напольным содержанием. В группах бройлеров, где применяли бифитрилак первые реагирующие птицы были найдены в возрасте 40 дней, средний геометрический титр антител составил 7,6. В контрольных интактных группах бройлеров первые реагирующие были найдены в возрасте 25 дней, средний геометрический титр антител составил 18,5, а в 50 дней (при убое) - 38,1. т.е. количество дополнительной диагностики с нарастанием титра антител по РНГА удвоился.

В наших исследованиях мы расширили применение РНГА, как диагностической реакции на микоплазмоза, до биотестирования влияния биостимуляторов (например, пробиотиков) на резистентность организма. Динамика образования и длительность сохранения антител по данным РНГА при применении бифитрилака сориентировала нас на понимание того, что пробиотик опосредовано, через стимуляцию иммунологической системы повышает резистентность организма птиц и тем самым контролирует соотношение инфекция/болезнь. Это особенно доказательно при сопоставлении результатов биотестирования и оценки общего состояния птицы, ее сохранности и продуктивности. На основании полученных данных представилось возможным сделать вывод, что предельным диагностическим титром антител при биотестировании резистентности птиц является 5 log2.

Гомеостаз большая проблема современной нормологии, поддержание гомеостаза означает не только сохранение постоянства или оптимальное восстановление и приспособление к условиям окружающей среды. С механизмами гомеостаза связано качественное изменение свойств организма и его реактивности. На основе закономерностей гомеостаза разрабатываются эффективные методы поддержания здоровья животных. Однако решение многих вопросов этого "черного ящика" дело будущего.

В медицине давно ведутся поиски биосистем, с помощью которых можно исследовать внутренние среды организма, в ветеринарии в частности для анализа токсикозов, мутагенности, тератогенности и стимулирующих свойств новых биостимуляторов. Хотя в сфере оценки свойств различных объектов биологические методы используют уже давно, единая терминология в этой области науки на сегодняшний день еще не сложилась. Даже в само понятие "биотестирование" исследователи могут вкладывать несколько различный смысл. Уяснение сути этих терминов дает ключ к научному пониманию процесса биотестирования, как такового, а следовательно, и к целенаправленному управлению им.

Биотестирование - это оценка свойств изучаемого объекта по его воздействию на биологическую тест-систему в стандартных условиях. В нашем случае определение резистентности птицы через ее иммунологическое состояние представляется как тест-система, состоящая из организма или группы организмов одного вида (кур или индеек) и антигенного препарата, приготовленного из условно-патогенного микроорганизма М. галлисептикум. По степени проявления тест-реакции (РНГА) можно судить о взаимодействии организма и микроба, т.е., является ли взаимодействие экстрацелюлярным паразитированием или интрацелюлярная патологией. Отсюда, полученные сведения можно экстраполировать на оценку устойчивости организма вплоть до элиминации условно-патогенного микроба или болезнь. Определение степени проявления тест-реакции, в нашем случае (тест-критерий), производится по титру антител к высокочувствительному эритроцитарному биопрепарату (ЭМГА). Тест-критерий - это показатель, на основании которого проводят оценку изменения состояния тест-системы, находящейся под воздействием комплекса внешних факторов, в том числе изменение внутренней среды организма при применении пробиотиков. Таким образом, оценка свойств исследуемого объекта зависит от ряда факторов: способа донесения действующего начала до тест-системы, характеристик самой тест-системы (вида тест-организмов, из которых состоит тест-система, их количества, состояния в момент тестирования и состава среды в которой они находятся), комплекса посторонних воздействий, выбранной тест-реакции и способа ее наблюдения, тест-критерия и, наконец, от квалификации исследователя, так как зачастую оценка свойств исследуемого образца может носить субъективный характер. Считаем необходимым подчеркнуть, что терминология при биотестировании имеет особое значение, поскольку любая область науки, завершающая стадию формирования, должна получить связную и внутренне непротиворечивую систему понятий и определений. Были продолжены исследования в направлении создания тест-системы определения уровня резистентности организма птиц в условиях промышленного птицеводства. На основе критического анализа и теоретического осмысления литературных данных, а также результатов собственных исследований сформированы научные подходы определения влияния пробиотиков на иммунологическое состояние организма сельскохозяйственных птиц. Обобщен и систематизирован накопленный опыт в области оценки воздействия пробиотиков на иммунологическую систему кур и индеек по реакции на антигены условно-патогенного штамма М. галлисептикум и расширены представления о реакции непрямой гемагглютинации как биотеста на укрепление здоровья птицы, при этом выявлены некоторые закономерности иммунологического процесса; сформирован комплекс мер для стандартизации процесса биотестирования и управления основными параметрами тест-системы; разработан эффективный, экспрессный, недорогой биотест с использованием эритроцитарного антигена, отвечающий сформулированным требованиям, который апробирован в производственных условиях и внедрен в практику нескольких специализированных птицехозяйств.

Выводы

1. Установлено статистически достоверное увеличение уровня естественной резистентности, сохранности, мясной продуктивности и эффективности использования кормов цыплятами-бройлерами, получавшими лактобактерин в первой трети откормочного периода курсам по 5 дней подряд в дозе 0,5 г/кг живой массы в день. И бифитрилак периодически в течение всего периода выращивания в дозах 30мг/гол., а начиная с 28-дневного возраста - 40 мг/гол. в сутки.

Бифитрилак и лактобактерин контролируют процесс колонизации кишечника птиц полезной микрофлорой и профилактируют эндогенные токсикозы. При назначении бифитрилака цыплятам сразу после вывода, у них к 3-дневному возрасту, концентрация бифидобактерий в общем биоценозе кишечника достигает 8,12±0,15 lg КОЕ/г (26,3 %); при использовании лактобактерина 6,65±0,16 (21,5%); молочно-кислых бактерий соответственно 7,24±0,24 (23,5%) и 7,62±0,17 (24,6%), что выше, чем в группе интактного контроля соответственно на 9,0% и 4,5% и 0,85% и 1,95%. Количество бактерий группы кишечной палочки понизилось на 9,5% и 7,4%.

2. Вынужденное назначение антибиотиков цыплятам для лечения бактериальных болезней в ходе экспериментов ухудшало развитие фабрициевой сумки, тимуса и селезенки, а использование пробиотиков вместо антибиотиков и после их курсового назначения активизировало развитие этих органов. Тимический индекс к концу выращивания цыплят при использовании лактобактерина был выше на 11,1% чем в контроле, а бифитрилака - на 17,8%. Индекс фабрициевой сумки был выше контрольного соответственно на 28,5 и 38,5%. Это свидетельствует о том, что использование пробиотиков способствовало предотвращению процессов ранней инволюции иммунокомпетентных органов и указывает на стабильность иммунной системы у подопытных цыплят по сравнению с контролем.

3. Применение исследуемых нами пробиотиков в первые пять дней выращивания, определенно вызвало повышение естественной резистентности и жизнеспособности подопытных цыплят. Так, при выпаивании лактобактерина ЛАСК была выше на 2,0-2,3%, а при скармливании бифитрилака - выше на 4,2-4,7%, по сравнению с интактным контролем. БАСК при этом возросла на 1,8-3,2% и 3,6-6,4% соответственно. Сохранность бройлеров в опытных группах была выше по результатам I недели выращивания - на 1,4-2,9%, II недели - на 1,5%, а за весь период откорма - на 5,6%.

Применение пробиотических препаратов при выращивании и эксплуатации птиц вызвало длительно протекающие процессы активизации показателей клеточных и гуморальных факторов защиты организма. Изменение концентрации лейкоцитов и лейкоформулы крови, лизоцимная и бактерицидная активность сыворотки, количество в ней гамма-глобулинов наблюдались у птиц во всех подопытных группах. Установлены достоверные отличия от контрольных показателей во всех проведенных экспериментах.

...