Разработка и усовершенствование технологий получения микробиологических питательных основ и сред
Выявление альтернативных источников белкового сырья для производства питательных сред. Обоснование и разработка промышленной технологии получения ферментативного пептона из рыбного сырья. Изучение физико-химических и биологических свойств препарата.
| Рубрика | Биология и естествознание |
| Вид | автореферат |
| Язык | русский |
| Дата добавления | 26.12.2017 |
| Размер файла | 142,3 K |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
Таблица 15. Сравнительная характеристика роста тест-штаммов из разведений 10-6 на разработанной среде, Columbia agar и питательном агаре
|
Тест-штаммы |
Рост тест-штаммов на предлагаемой среде (M±m) |
Рост тест-штаммов на Columbia agar фирмы "Merck" (M±m) |
Рост тест-штаммов на питательном агаре (M±m) |
|
|
КОЕ и размер (d) колоний |
КОЕ и размер (d) колоний |
КОЕ и размер (d) колоний |
||
|
S. pyogenes Dick 1 |
14,0±2,0 d-1,0±0,1 |
16,0±2,0 d-1,0±0,1 |
5,0±1,0 точечные |
|
|
S. pyogenes 1512 |
22,0±3,0 d-1,0±0,1 |
24,0±4,0 d-1,0±0,1 |
6,0±1,0 точечные |
|
|
S. pneumoniae LD |
22,0±2,0 d-0,8±0,1 |
26,0±3,0 d-0,8±0,1 |
нет роста |
|
|
S. viridans 22 |
24,0±2,0 d-1,2±0,1 |
22,0±2,0 d-1,2±0,1 |
20,0±2,0 d-1,2±0,1 |
|
|
S. aureus Wood-46 |
36,0±3,0 d-2,0±0,15 |
32,0±3,0 d-2,0±0,2 |
29,0±2,0 d-1,6±0,2 |
Разработка сухой селективной среды для выделения B. cereus
Практические лаборатории РФ для диагностики инфекций, вызываемых B. cereus используют среды лабораторного приготовления, которые обладают слабыми селективными свойствами в отношении микробов-ассоциантов.
Исходя из вышеизложенного, была поставлена задача - разработать селективную среду для выделения B. cereus, способную ингибировать рост сопутствующих грамотрицательных и грамположительных микробов и подавлять роение протеев.
В качестве питательной основы использовали сухой питательный агар.
Для выделения B. cereus из клинического материала и продуктов питания, которые могут содержать большое количество микробов-ассоциантов (S. aureus, E. coli, Klebsiella spp., Proteus spp., Bacillus spp.), необходимо наличие в среде селективных компонентов.
Исходя из литературных данных об ингибирующем действии солей лития на рост грамотрицательных бактерий и лимоннокислого натрия на рост грамположительных бактерий (Р.С. Джалилова, 1987; Van Netten, 1989), эти соли были введены в состав разрабатываемой среды. Установлено, что сернокислый литий в концентрации 0,5% полностью подавлял рост E. coli 3912/41 и K. pneumoniae 4140 из разведения 10-3, а лимоннокислый натрий в такой же концентрации ингибировал рост S. aureus FDA 209 Р, В. subtilis 6051, B. megaterium 89, B. mycoides 587 из разведений 10-3, не влияя на рост B. cereus. Меньшие концентрации солей не оказывали необходимого ингибирующего эффекта на их рост, а более высокие - подавляли рост B. cereus. Однако данные соли не подавляли роение протеев, и в случае их наличия в клиническом материале выделение B. cereus в чистой культуре не представлялось возможным. Основываясь на литературных данных о подавлении роения протеев с помощью некоторых сульфаниламидных препаратов (Smith B. A., Baird-Parker A. C., 1964), были проведены исследования по изучению влияния сульфадимизина и сульфадиметоксина на рост B. cereus и на их способность подавлять роение протеев. Установлено, что указанные препараты в концентрациях 0,004-0,005% полностью подавляли роение протеев и не оказывали существенного влияния на рост тест-штаммов B. cereus. Отмечено лишь незначительное снижение диаметра колоний. Более низкие концентрации препаратов роение протеев не подавляли, а более высокие ингибировали рост B. cereus.
Одним из основных дифференцирующих признаков при идентификации B. cereus является проявление ее лецитиназной активности (З.М. Андреева, М.Н. Лебедева, 1986; Ю.В. Езепчук, Ф.С. Флуер, 1971). Продукция фермента, имеющего таксономическое значение, изучается на средах с добавлением желточной эмульсии. Под действием фосфолипазы-С B. cereus происходит расщепление лецитина яичного желтка с образованием жирных кислот и щелочного продукта фосфохолина (Г.Б. Герасимене, А.А. Глемжа, 1980). Для определения изменения рН среды, происшедшего в результате ферментативного расщепления лецитина, в состав среды введен индикатор бромкрезоловый пурпуровый в общепринятой концентрации (0,004%).
Результаты исследований показали, что все испытанные тест-штаммы B. cereus образовывали круглые матовые колонии d-2,0-2,4 мм, окруженные зоной коагулята (d-3,0-4,0 мм) светло-фиолетового цвета, что свидетельствовало о проявлении лецитиназной активности.
На основании проведенных исследований составлена рецептура среды для выделения B. cereus, включающая следующие компоненты в (г/л): питательный агар - 35,0, натрий лимоннокислый - 5,0, литий сернокислый - 5,0, сульфадимезин или сульфадиметоксин - 0,05, бромкрезоловый пурпуровый - 0,04.
В табл.16 представлена сравнительная характеристика роста тест-штаммов B. cereus и микробов-ассоциантов на разработанной среде и среде Пивоварова (контроль).
Из табл.16 видно, что полученная среда имеет существенное преимущество по сравнению с контрольной средой, она подавляет рост не только грамотрицательных микробов-ассоциантов, но и грамположительных: B. polymyxa 26, S. aureus FDA 209P, В. subtilis 6051, B. megaterium 89, B. mycoides 587. На контрольной среде рост данных микробов-ассоциантов не подавлялся. Кроме того, учет результатов посевов на предлагаемой среде можно проводить уже через 18-20 ч, а на контрольной не менее чем через 48 ч.
Таким образом, разработанная среда, благодаря своим высоким селективным свойствам обеспечивает выделение B. cereus в чистой культуре в сравнительно короткие сроки.
Внедрение данной среды в практику позволит улучшить бактериологическую диагностику пищевых отравлений, вызываемых B. cereus. На среду составлена НД. Разработка защищена патентом РФ №2201965.
Таблица 16. Сравнительная характеристика роста тест-штаммов B. cereus и микробов-ассоциантов на разработанной среде и среде Пивоварова (контроль)
|
Тест-штаммы |
Посевная доза |
КОЕ на разработанной среде (М±m) |
КОЕ на контрольной среде Пивоварова (М±m) |
Наличие зон лецитиназной активности |
||
|
На разработанной среде |
На контрольной среде |
|||||
|
B. cereus 2010 |
10-6 |
32,0±4,0 |
28,0±3,0 |
+ |
+ |
|
|
B. cereus 8035 |
10-6 |
30,0±3,4 |
35,0±3,0 |
+ |
+ |
|
|
B. cereus 2527 |
10-6 |
35,0±4,5 |
36,0±5,0 |
+ |
+ |
|
|
В. subtilis АТСС 6051 |
10-3 |
нет роста |
сплошной рост |
- |
- |
|
|
B. megaterium 89 |
10-3 |
нет роста |
сплошной рост |
- |
- |
|
|
B. mycoides 587 |
10-3 |
нет роста |
сплошной рост |
- |
- |
|
|
B. polymyxa 26 |
10-3 |
нет роста |
сплошной рост |
- |
- |
|
|
E. coli 3912/41 |
10-3 |
нет роста |
нет роста |
- |
- |
|
|
K. pneumoniae 4140 |
10-3 |
нет роста |
нет роста |
- |
- |
|
|
S. aureus FDA 209-Р |
10-3 |
нет роста |
сплошной рост |
- |
+ |
|
|
S. aureus Wood-46 |
10-3 |
нет роста |
сплошной рост |
- |
+ |
|
|
S. aureus ATCC 25923 |
10-3 |
нет роста |
сплошной рост |
- |
+ |
|
|
E. faecalis 775 |
10-3 |
нет роста |
сплошной рост |
- |
- |
|
|
P. vulgaris HX19 |
10-5 |
50,0±3,0 (О-форма) |
48,0±3,0 (О-форма) |
- |
- |
|
|
P. mirabilis 71/2 |
10-5 |
48,0±4,0 (О-форма) |
42,0±4,0 (О-форма) |
- |
- |
Примечание: на контрольной среде учет результатов посевов проводили через 36-48 ч, так как через 18-20 ч рост B. cereus отсутствовал
Выводы
1. Выявлены альтернативные источники белкового сырья для получения питательных основ, позволяющие осуществить замену одних видов сырья другими без изменения конечных характеристик препаратов и условий их производства на всех стадиях технологического процесса.
2. Экспериментально обоснована и впервые разработана технология получения сухого ферментативного пептона из рыбного сырья, который по физико-химическим и биологическим свойствам не уступает аналогичным препаратам ведущих зарубежных фирм.
3. Разработана технология получения сухого ферментативного гидролизата сои, содержащего комплекс питательных веществ в виде аминокислот, пептонов, углеводов, позволяющих выявлять рост различных микроорганизмов при минимальной посевной дозе.
4. Предложены новые технологические решения получения компонентов питательных сред: желточной эмульсии, готовой к употреблению, с длительным сроком хранения и экстракта кормовых дрожжей с высокой степенью прозрачности.
5. Создана сухая электролит-дефицитная питательная основа из рыбного сырья и научно обоснована целесообразность ее использования в составе сред для подавления роения протея.
6. На электролит-дефицитной питательной основе разработаны новые сухие питательные среды: электролит-дефицитный питательный агар для выделения, дифференциации и количественного определения бактерий в моче; электролит-дефицитный кристаллвиолет сорбитол агар для выделения и дифференциации E. coli O157: H7 и других энтеробактерий по признаку ферментации сорбита; электролит-дефицитный агар с эозин-метиленовым синим для выделения и дифференциации энтеробактерий.
7. Сконструирована сухая селективная среда для выделения и дифференциации энтеробактерий, применение которой совместно с электролит-дефицитным питательным агаром при бактериологическом анализе позволяет ускорить идентификацию микроорганизмов в моче.
8. Разработана новая сухая питательная среда для определения антибактериальных субстанций в моче, обладающая высокой чувствительностью и способная регистрировать низкие концентрации антибактериальных препаратов в моче.
9. Экспериментально обоснованы и разработаны новые питательны среды для накопления и выделения гемокультур, обладающие высокой чувствительностью и значительным накопительным эффектом в отношении основных возбудителей бактериемии и сепсиса, что позволяет выделить гемокультуру при минимальном содержании возбудителя в крови.
10. Создана новая селективная питательная среда для выделения B. cereus. Среда полностью ингибирует рост микробов-ассоциантов, что способствует выделению B. cereus в чистой культуре.
Список работ, опубликованных по теме диссертации
1. Джалилова Р.С., Кириленко О.А., Султанов З.З. Сухая питательная среда для определения лецитиназной активности B. cereus // Лабораторное дело. - 1985. - №2. - С.117-119.
2. Султанов З.З., Кириленко О.А., Джалилова Р.С. Питательная среда для выделения B. cereus. Авт. свид. №1277613.
3. Меджидов М.М., Султанов З.З. Использование непищевого сырья в производстве микробиологических питательных сред. Махачкала, - 1986, 71 с.
4. Кириленко О.А., Джалилова Р.С., Султанов З.З., Правниченко Л.И. Выделение B. cereus из консервов пищевых концентратов на сухих питательных средах. // Ж. Пищевая промышленность. - 1988. - №5. - С.33-35.
5. Султанов З.З., Джалилова Р.С., Кириленко О.А. Сухой селективный агар для выделения B. cereus. // Актуальные вопросы клинической микробиологии в неинфекционной клинике. Тезисы докладов II Всесоюзной конференции. Барнаул, 1988.Ч. I, 21-22 июля. - С. 20.
6. Султанов З.З., Джалилова Р.С. Технология получения сухой питательной среды для определения лецитиназной активности B. cereus. // Тезисы конференции "Актуальные вопросы разработки препаратов медицинской биотехнологии". Махачкала, 1988.Ч.I. - С.91-92.
7. Меджидов М.М., Султанов З.З., Костенко Л.С., Смирнова Е.А., Сулименко И.М. Использование концентрата кормового лизина в получении питательных сред. // Журн. Микробиол. - 1988. - №7. - С.103.
8. Рогожин С.В., Вайнерман В.Е., Гамзазаде А.И., Быков В.П., Быкова В.М., Немцев С.В., Меджидов М.М., Султанов З.З., Степанова Э.Д., Мамцис А.М. Способ переработки панцирьсодержащих отходов ракообразных. Авт. свид. №1587678. Для служебного пользования.
9. Султанов З.З., Степанова Э.Д., Меджидов М.М., Кулакова Л.С., Какулина Е.А., Эпштейн Л.М., Жданюк В.М., Пивненко Т.Н. Отходы переработки гидробионтов в производстве сухих питательных сред. // Материалы Всесоюзного совещания. Биологически активные вещества гидробионтов - новые лекарственные, лечебно-профилактические и технические препараты. Владивосток, - 1991. - С.13-14.
10. Султанов З.З., Степанова Э.Д., Кулакова Л.С. Производство микробиологических сред из отходов промышленности. // Ж. Рыбное хозяйство. - 1991. - №6. - С.74-75.
11. Султанов З.З., Степанова Э.Д., Какулина Е.А., Перепелица Л.Г. Сухие питательные среды для диагностики уроинфекций. // Материалы VII Всероссийского общества эпидемиологов и паразитологов. М., 1997.Т.I. - С.502-503.
12. Султанов З.З. Средство для подавления роения бактерий рода протея. Патент №2145352. Бюлл. Изоб. полезные модели. М., 2000, - №4 (2 ч). - С.412.
13. Султанов З.З., Степанова Э.Д., Какулина Е.А., Кулакова Л.С., Перепелица Л.Г., Рамазанова Н.Р. Разработка комплекса питательных сред для бактериологического исследования мочи. // Разработка и производство диагностических питательных сред и микротестсистем. Материалы Международной научно-практической конференции. Махачкала, - 1998. - С.56-57.
14. Султанов З.З., Степанова Э.Д., Гриднева Н.И., Какулина Е.А. Бактериологическая диагностика эшехириозов, вызываемых энтерогеморрагическим штаммом Escherichia coli O157: H7. // Тезисы докладов VI Российского конгресса "Человек и лекарство". М., 1999. - С.334.
15. Меджидов М.М., Гриднева Н.И., Султанов З.З. Справочник по микробиологическим питательным средам и микротестсистемам. Махачкала, 1999. - 98 с.
16. Султанов З.З., Степанова Э.Д., Какулина Е.А. Селективная питательная среда для выделения клинических штаммов E. coli O157: H7. // Журн. Микробиол., - 2000. - №1. - С.48-50.
17. Султанов З.З., Степанова Э.Д., Какулина Е.А. Питательная среда для выделения и предварительной идентификации E. coli O157: H7. Патент №2157837. Бюлл. Изоб. полезные модели. М., 2000, - №19 (1 ч). - С.103.
18. Султанов З.З., Степанова Э.Д., Какулина Е.А. Питательная среда для выделения гемокультур при диагностике брюшного тифа и паратифов. Патент №2175671. Бюлл. Изоб. полезные модели. М., 2001, - №31 (2 ч). - С.345.
19. Султанов З.З., Кулакова Л.С., Перепелица Л.Г. Тест-система для определения антибактериальных субстанций в моче. Патент №2164946. Бюлл. Изоб. полезные модели. М., 2001, - №10 (2 ч). - С.245.
20. Султанов З.З., Кулакова Л.С., Перепелица Л.Г., Абдулганиева С.К. Тест-бульон для определения антибактериальных субстанций в моче. // Разработка и производство диагностических сухих питательных сред и микротест-систем. Материалы 3-й Международной научно-практической конференции. Махачкала. - 2001. - С.72-73.
21. Султанов З.З., Кулакова Л.С., Перепелица Л.Г., Абдулганиева С.К. Способ получения желточной эмульсии для определения лецитиназной активности микроорганизмов. Патент №2203958. Бюлл. Изоб. полезные модели. М., 2003, - №13 (2 ч). - С.370.
22. Султанов З.З., Кулакова Л.С., Какулина Е.А. Разработка и использование электролит-дефицитной питательной основы в производстве сухих питательных сред. // Разработка и производство диагностических сухих питательных сред и микротест-систем. Материалы 3-й Международной научно-практической конференции. Махачкала. - 2001. - С.10-12.
23. Султанов З.З., Степанова Э.Д., Какулина Е.А. Питательная среда для выделения и предварительной дифференциации гемокультур сальмонелл. // Материалы VIII съезда всероссийского общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов. М., 2002. - Т.3. - С.341.
24. Султанов З.З., Степанова Э.Д., Какулина Е.А. Питательная среда для выделения патогенных энтеробактерий. Патент №2179582. Бюлл. Опуб. Изоб. полезные модели. М., 2002, - №5 (1 ч). - С. 193-194.
25. Султанов З.З., Степанова Э.Д., Кулакова Л.С., Горелова В.Г. Двухфазная питательная среда для накопления и выделения гемокультуры. // Материалы 4-ой Международной научно-практической конференции, посвященной 50-летию НПО "Питательные среды" МЗ РФ. Махачкала, 2003. - С.30-32.
26. Султанов З.З., Степанова Э.Д., Алиев А.З., Какулина Е.А., Перепелица Л.Г., Рамазанова Н.Р. Разработка технологии получения сухого пептона из рыбного сырья. // Разработка и стандартизация микробиологических питательных сред и тест-систем. Материалы 4-ой Международной научно-практической конференции, посвященной 50-летию НПО "Питательные среды" МЗ РФ. Махачкала, 2003. - С.38-39.
27. Султанов З.З., Степанова Э.Д., Какулина Е.А. Повышение эффективности диагностики кишечных инфекций с помощью модифицированной среды Левина. // Материалы республиканской научно-практической конференции "Новые технологии в медицине". Махачкала, 2003. - С.349-350.
28. Султанов З.З., Алиев А.З., Какулина Е.А., Перепелица Л.Г. Основные технологические аспекты производства гидролизатов сои. // Разработка и стандартизация микробиологических питательных сред и тест-систем. Материалы 4-ой Международной научно-практической конференции, посвященной 50-летию НПО "Питательные среды" МЗ РФ. Махачкала, 2003. - С.40-41.
29. Султанов З.З., Кулакова Л.С., Перепелица Л.Г., Абдулганиева С.К. Питательная среда для выделения Bacillus cereus. Патент №2201965. Бюлл. Изоб. полезные модели.М., - 2003, - №10 (2 ч). - С.402-403.
30. Султанов З.З., Меджидов М.М., Степанова Э.Д., Какулина Е.А., Горелова В.Г. Повышение эффективности диагностики брюшного тифа и паратифов с помощью новой сухой питательной среды для выделения и предварительной дифференциации гемокультур сальмонелл. // Актуальные вопросы вакцинно-сывороточного дела в XXI веке. Материалы Всероссийской научной конференции, посвященной 105-летию Пермского НПО "Биомед". Пермь, - 2003. - С.187-189.
31. Султанов З.З., Кулакова Л.С., Абдулганиева С.К., Перепелица Л.Г. Усовершенствование бактериологической диагностики B. cereus. // Международный конгресс. Ликвидация и элиминация инфекционных болезней - прогресс и проблемы. Санкт-Петербург, - 2003. - С.180.
32. Султанов З.З., Меджидов М.М., Степанова Э.Д., Кулакова Л.С., Горелова В.Г. Совершенствование лабораторной диагностики бактериемии и сепсиса. // Международный конгресс. Ликвидация и элиминация инфекционных болезней - прогресс и проблемы. Санкт-Петербург, - 2003. - С.180.
33. Султанов З.З., Кулакова Л.С., Перепелица Л.Г., Абдулганиева С.К. Селективная среда для выделения B. cereus. // Журн. Микробиол. - 2004. - №4. - С.74-76.
34. Султанов З.З., Степанова Э.Д., Меджидов М.М., Горелова В.Г. Сравнительная характеристика питательных сред для накопления и выделения гемокультур. // Материалы Всероссийской научной конференции "Актуальные вопросы разработки, производства и применения иммунобиологических и фармацевтических препаратов. Томск, - 2004. - С.233-236.
35. Омарова Э.Б., Меджидов М.М., Султанов З.З. Способ получения стимулятора роста микроорганизмов из кормовых дрожжей. Патент №2227153. Бюлл. Изоб. полезные модели. М., 2004, - №11 (3 ч). - С.516.
36. Меджидов М.М., Султанов З.З., Степанова Э.Д. Способ получения питательной основы микробиологических питательных сред. Патент №2232187. Бюлл. Изоб. полезные модели. М., 2004, - №19 (3 ч). - С.477.
37. Султанов З.З., Меджидов М.М., Алиев А.З., Какулина Е.А., Степанова Э.Д. Способ получения пептона "Каспий". Патент №2235770. Бюлл. Изоб. полезные модели. М., 2004, - №25 (3 ч). - С.453-454.
38. Султанов З.З., Меджидов М.М., Степанова Э.Д., Кулакова Л.С., Горелова В.Г., Абдулганиева С.К. Питательная среда для выделения гемокультур. Патент №2265654. Бюлл. Изоб. полезные модели. М., 2004, - №11 (3 ч). - С.516.
39. Султанов З.З., Меджидов М.М., Алиев А.З., Какулина Е.А., Перепелица Л.Г., Рамазанова Н.Р., Султанова Э.И. // Разработка технологии получения гидролизата сои. Материалы третьего съезда общества биотехнологов России им. Ю.А. Овчинникова.М., - 2005. - С.157-158.
40. Султанов З.З., Степанова Э.Д., Кулакова Л.С., Рамазанова Н.Р. Разработка и экспериментальное изучение основы питательной среды для культивирования фастидиозных микроорганизмов. // Медицинские иммунобиологические препараты в XXI веке: разработка, производство и применение. Материалы Всероссийской научной конференции с международным участием, посвященной 100-летию со дня основания филиала ФГУП "НПО "Микроген" МЗ и СР РФ "Иммунопрепарат". Уфа, - 2005, часть I, - С.106-108.
41. Султанов З.З., Степанова Э.Д., Кулакова Л.С., Горелова В.Г., Рамазанова Н.Р., Гаджиева С.М. Разработка и оценка диагностической ценности питательной среды для накопления и выделения гемокультуры. // Журн. микробиол. - 2005. - №3. - С. 19-22.
42. Горелова В.Г., Меджидов М.М., Омарова С.М., Султанов З.З., Степанова Э.Д. Клинические испытания опытного образца коммерческой двухфазной среды для выделения гемокультуры. // Ж. Клиническая лабораторная диагностика. - 2006. - №2. - С.38-40.
43. Султанов З.З., Степанова Э.Д., Меджидов Ш.М., Кулакова Л.С., Горелова В.Г. Питательная среда для микробиологического исследования крови. Патент №2267537. Бюлл. Опуб. Изоб. полезные модели. М., 2004, - №36 (3 ч). - С.497.
44. Меджидов М.М., Степанова Э.Д., Султанов З.З., Омарова С.М., Горелова В.Г., Кулакова Л.С., Какулина Е.А. Новые питательные среды в бактериологической диагностике бактериемии и сепсиса. // Тезисы Всероссийской научно-практической конференции "Вакцинология 2006. Совершенствование иммунобиологических препаратов, средств профилактики, диагностики и лечения инфекционных болезней".М., - 2006. - С.64.
45. Султанов З.З., Степанова Э.Д., Кулакова Л.С., Какулина Е.А., Перепелица Л.Г., Рамазанова Н.Р. Электролит-дефицитная питательная среда для лабораторной диагностики острых эшерихиозов, вызываемых тест-штаммом E. coli O157: H7. // Острые кишечные инфекции: актуальные вопросы в клинике и эксперименте. Материалы юбилейной Всероссийской научно-практической конференции, посвященной 70-летию кафедры инфекционных болезней им. академика Г.П. Руднева. Махачкала, - 2006. - С.134-135.
46. Султанов З.З. Основные технологические аспекты получения микробиологических питательных сред. // Материалы I Всероссийской конференции "Питательные среды и методы культивирования клеток для биологии, медицины и биоиндустрии: фундаментальные и прикладные аспекты. Пущино, - 2007. - С.26-27.
47. Султанов З.З., Меджидов Ш.М., Меджидов М.М., Какулина Е.А. Способ получения гидролизата сои. Патент №2295249. Бюлл. Изоб. полезные модели. М., 2007. - №8 (2 ч) - С.885.
Размещено на Allbest.ru
...Подобные документы
Состав питательных сред для культивирования микроорганизмов. Физиологические функции элементов, используемых для их приготовления. Качественное преимущество промышленных питательных сред. Технология и многостадийный контроль качества их производства.
контрольная работа [27,8 K], добавлен 12.02.2015Состав и направления деятельности кафедры микробиологии и иммунологии. Принципы работы в микробиологической лаборатории. Подготовка посуды и инструментов. Техника отбора проб, посева и приготовления питательных сред. Методы идентификации микроорганизмов.
отчет по практике [28,8 K], добавлен 19.10.2015Характеристика целлюлозы и ее производных. Ферментативный гидролиз лигноцеллюлозных материалов в ацетатном буфере и в водной среде. Зависимость эффективности ферментативного гидролиза от условий перемешивания, от концентрации субстрата, от сырья.
дипломная работа [993,2 K], добавлен 19.01.2016Химические элементы, входящие в состав живой материи. Синтез микроорганизмами различных ферментов. Физиология и принципы культивирования микроорганизмов. Метаболизмы, дыхание микроогранизмов, краткая характеристика питательных сред, рост и размножение.
реферат [26,1 K], добавлен 21.01.2010Механизм воздействия прокариотических микроорганизмов на спав и липазу. Щелочные протеиназы рода Bacillus. Методика выделения, изучение свойств концентрированного ферментного препарата и порядок его применения в процессе обезжиривания меховой овчины.
дипломная работа [169,7 K], добавлен 27.11.2010Хелатирующие соединения. Строение и комплексообразование ЭДТА. Бактериальная деградация ЭДТА. Кометаболизм. Периодическое культивирование и его условия. Методика приготовления питательных сред. Вычисление энергетического выхода роста штамма LPM-4.
дипломная работа [77,4 K], добавлен 15.12.2008Исследование использования углерода и различных природных веществ микроскопическими грибами. Методы выделения и идентификации плесневых грибов, принципы составления питательных сред для них. Рост микромицетов на различных источниках углеродного питания.
дипломная работа [778,3 K], добавлен 11.09.2010История получения белка с помощью микроорганизмов. использование высших базидиальных грибов для получения белка кормового, пищевого назначения. Получение белка путем глубинного культивирования на питательных средах. Сохранение и усиление грибного аромата.
реферат [28,9 K], добавлен 13.03.2019Изучение метода получения моноклональных антител путем слияния клеток мышиной миеломы с В-лимфоцитами. Основные среды, употребляемые при получении гибридов. Приготовление отдельных компонентов сред для культивирования. Процесс клонирования гибридом.
контрольная работа [40,6 K], добавлен 22.01.2015Обзор классификации, свойств и биологической роли витаминов, анализ их основных природных источников и антагонистов. Изучение липидов, процесса брожения и его типов. Характеристика физико-химических свойств белков и уровней организации белковых молекул.
шпаргалка [53,8 K], добавлен 16.05.2010Обзор анаэробного метаболического распада молекул питательных веществ без окисления. Возбудитель уксуснокислого брожения. Развитие уксуснокислых бактерий в напитках. Способ получения столового уксуса. Промышленное получение и применение лимонной кислоты.
реферат [110,3 K], добавлен 01.03.2014Принцип саморегуляции функциональной системы. Формирование пищевой мотивации. Роль процессов, протекающих в полости рта во время приема пищи в поддержании оптимального для метаболизма уровня питательных веществ в крови. Механизм сенсорного насыщения.
презентация [2,8 M], добавлен 24.02.2015Минеральные соли, соединения углерода, азота, кислорода, водорода, серы, фосфора, как источники основных биогенных химических элементов, необходимых для построения, функционирования и метаболизма прокариотической клетки. Факторы роста микроорганизма.
курсовая работа [298,4 K], добавлен 23.01.2015Типы дыхания микроорганизмов. Транспорт электронов при дыхании и различных типах анаэробного способа получения энергии. Наиболее доступные источники углерода для бактерий. Механизм поступления питательных веществ. Использование неорганического азота.
реферат [799,3 K], добавлен 26.12.2013Нарушение определенных функций растений, болезненные явления и симптомы, вызываемые недостатком питательных веществ. Причины голодания растений. Признаки азотного, фосфорного, марганцевого и калийного голодания. Подкормка растений недостающим элементом.
презентация [2,9 M], добавлен 06.01.2016Методы исследования физико-химических свойств, тканевой и субклеточной локализации основных представителей биологических молекул, методы их выделения и очистки. Квалификационная характеристика специалиста-биохимика. Область профессиональной деятельности.
учебное пособие [24,8 K], добавлен 19.07.2009Изучение отдельных представителей семейства бобовых, выявление содержания в них флавоноидов, установление диапозона лечебных свойств лекарственного растительного сырья, богатого флавоноидами. Лекарственные растения, травы и растительные препараты.
курсовая работа [40,9 K], добавлен 19.06.2008Изучение ферментов, их свойств и механизма биологического действия. Проведение исследования современных представлений о механизме ферментативного трансаминирования. Разработка общей теории пиридоксалевого катализа. Строение фермент-субстратного комплекса.
реферат [189,0 K], добавлен 14.03.2015Ускорение химических реакций с помощью катализаторов. Особенности ферментов (энзимов) как высокоспецифичных белков, выполняющих функции биологических катализаторов. Строение ферментов, их специфичность и классификация. Этапы ферментативного катализа.
презентация [3,4 M], добавлен 20.11.2014Описания источников и предпосылок получения, необходимых людям материальных и духовных благ, заключенных в объектах живой природы. Животный мир - один из важнейших биологических ресурсов. Исследование месторасположения северного и южного лесного пояса.
презентация [1,4 M], добавлен 20.06.2014
