Учебно-методическое пособие для подготовки к государственному аттестационному экзамену по практическим навыкам

и) Извлечь зеркало из влагалища.

к) Замочить весь использованный материал: перчатки, инструменты, мягкий инвентарь в дезинфицирующем растворе.

л) Вымыть руки с мылом и осушить.

2. Мазок по Папаниколау (Паптест) - метод морфологического анализа, основанный на изучении и оценке клеточного материала. Метод даёт возможность оценить структуру и клеточный уровень повреждения тканей, попавших в мазокотпечаток. Цитологические критерии основаны на выраженности признаков клеточной атипии.

Цель:

Выявление морфологических особенностей клеток, характеризующих конкретный патологический процесс.

Показания:

Скрининг РШМ (рак шейки матки).

Подготовка к исследованию:

В течение суток перед исследованием не следует проводить спринцевание и применять вагинальные препараты. Желательно воздержание от половых контактов в течение 1-2 дней до исследования. Нельзя брать материал для исследования во время менструации.

Для получения материала используют следующие инструменты: шпатель Эйра (для взятия мазков с поверхности эктоцервикса), ложечку Фолькманна, скринет, эндобранш (для взятия эндоцервикальных мазков и др.).

Техника:

Для получения оптимальных результатов цитологического исследования необходимо забирать образцы отдельно с эктоцервикса и из эндоцервикса. Взятие материала осуществляют до проведения бимануального исследования.

После введения зеркал во влагалище, удаляют ватным тампоном выделения с поверхности шейки матки. В наружный маточный зев вводят наконечник шпателя Эйра, вращательным движением на 360 градусов с нажимом забирают клеточный состав с экзоцервикса (с многослойного плоского эпителия) и области стыка эндоцервикса и экзоцервикса (с зоны метапластического эпителия). Затем в цервикальный канал вводят специальную щеточку (cer-brash) на 1-2 см и вращательным движением берется материал со стенок цервикального канала. Полученный материал распределяют тонким слоем на поверхности обезжиренных, маркированных в соответствии с местом взятия, предметных стекол. Мазки высушивают на воздухе.

Интерпретация результатов: классификация цервикальных мазков по папаниколау

- Первый класс -- атипических клеток нет, нормальная цитологическая картина.

- Второй класс -- изменение морфологии клеточных элементов, обусловленное воспалительным процессом во влагалище и/или шейке матки.

- Третий класс -- единичные клетки с аномалиями цитоплазмы и ядер.

- Четвёртый класс -- отдельные клетки с явными признаками злокачественности: увеличение массы ядер, аномалии цитоплазмы, изменения ядра, хромосомные аберрации.

- Пятый класс -- в мазке наблюдают большое количество атипических клеток.

3. Методика взятия мазков на гормональную цитологию.

Динамика изменения кольпоцитологических показателей отражает суммарное колебание уровня яичниковых гормонов в организме на протяжении менструального цикла. Метод позволяет оценивать уровень эстрогенной, гестагенной, а, в ряде случаев, и андрогенной насыщенности организма.

Материал забирают из переднего свода шпателем или тампоном и равномерно наносят на предметное стекло. Серия мазков берется в динамике менструального цикла с ориентацией на его середину (сроки овуляции): 4-9, 10-13, 14-15, 16-20, 21-28-й дни цикла. После полихромной окраски в мазке исследуется соотношение парабазальных, промежуточных и поверхностных клеток, выражаемое в индексе созревания (ИС). Кариопикнотический индекс (КПИ) - процент клеток с мелкими, пикнотическими ядрами на 100 поверхностных клеток. Эозинофильный индекс (ЭИ) - процент эозинофильно окрашенных клеток поверхностных слоев на 100 поверхностных клеток. Максимальные значения всех трех показателей в сроки овуляции: ИС 0/15/85%, КПИ - 80,7± 9,3, ЭИ - 75,4 ±0,6.

78. Правила взятия мазка на флору у гинекологической пациентки

Микробиологические методы исследования используют для подтверждения или исключения заболеваний инфекционной природы.

Показания: диагностика специфического характера воспалительных заболеваний, определение чувствительности микрофлоры к антибактериальным препаратам.

1. Мазок на микроскопию бактерий.

Цель: диагностическая

Задачи: взятие посевов из цервикального канала и влагалища для бактериологического исследования.

Оборудование: мыло, перчатки, гинекологическое кресло, зеркала, стерильные ватные тупфера/тампоны вмонтированные в пробирки, емкости с дезрастворами, направление с указанием Ф.И.О. пациента, возраста, характера и даты взятия материала.

Методика:

1. Выписать направление.

2. Вымыть руки с мылом и осушить, надеть перчатки.

3. Больную уложить на гинекологическое кресло в спинно-ягодичном положении с разведенными и согнутыми в тазобедренных суставах ногами.

4. Ввести зеркало в сомкнутом состоянии на всю глубину влагалища, раскрыть и фиксировать в таком положении с помощью замка.

5. Правила взятия клинического материала:

Отделяемое из уретры берут пластиковой одноразовой стерильной бактериологической петлёй объёмом 1 мкл или тонким дакроновым тампоном на алюминиевой проволоке. Предварительно наружное отверстие уретры следует очистить марлевым или ватным тампоном. При отсутствии видимых выделений врач может выполнить лёгкий массаж уретры. Тампон/петлю вводят в уретру на 1-2 см и вынимают, слегка нажимая на боковые и заднюю стенки. Для микроскопического и иммунофлюоресцентного исследования материал переносят на предметное стекло, прокатывая по нему тампон или передвигая петлю с материалом с лёгким нажимом. Для культурального исследования и ПЦР материал помещают в пробирки с соответствующими транспортными средами.

Наружные половые органы, преддверие влагалища: мазки берут стерильными ватными (дакроновыми) тампонами с патологически изменённых участков; при воспалении большой железы преддверия проводят пункцию, при вскрытии абсцесса железы берут гной стерильным ватным тампоном.

Влагалище: после введения зеркала и подъёмника отделяемое берут стерильным ватным тампоном из заднего свода или с патологически изменённых участков слизистой оболочки; с целью культурального исследования тампон помещают в стерильную пробирку и немедленно отправляют в лабораторию. Если это требование не может быть выполнено, взятую пробу помещают в пробирку с транспортной средой.

С целью микроскопии взятую пробу переносят на предметное стекло, перекатывая тампон всеми сторонами по стеклу, стараясь, чтобы материал распределился равномерно, сохраняя естественное взаиморасположение всех компонентов биоценоза; мазок высушивают на воздухе, фиксируют 96% раствором этанола (2-3 капли на мазок до полного испарения), маркируют стекло и в закрытой ёмкости отправляют в лабораторию. При культуральной диагностике трихомониаза взятое отделяемое сразу помещают в питательную среду и транспортируют в лабораторию.

Шейка матки: после обнажения шейки матки в зеркалах влагалищную часть её тщательно обрабатывают ватным тампоном, смоченным стерильным 0,9% раствором натрия хлорида или водой, затем стандартный ватный тампон осторожно вводят в шеечный канал, берут отделяемое, вынимают тампон, не касаясь стенок влагалища, и помещают его в пробирку с транспортной средой для проведения культурального исследования. Для выполнения микроскопии методом иммунофлюоресценции в различных модификациях, вирусологического исследования или ПЦР материал берут специальным тампономщёточкой, который вводят в канал после удаления слизистой пробки или взятия пробы на культуральное исследование. После введения тампонащёточки в цервикальный канал на 1-2 см его вращают несколько раз, чтобы получить клеточный соскоб, но не допуская скарификации и попадания элементов крови на тампон. Взятый материал помещают в пробирки с соответствующей транспортной средой. Для микроскопического и иммунофлюоресцентного исследования взятую пробу сразу переносят с тампона на предметное стекло.

6. Извлечь зеркало из влагалища.

7. Замочить весь использованный материал: перчатки, инструменты, мягкий инвентарь в дезинфицирующем растворе.

8. Вымыть руки с мылом и осушить.

9. Доставить материал в лабораторию.

Полученный материал распределяют тонким слоем на поверхности обезжиренных, маркированных в соответствии с местом взятия, предметных стекол. Мазки высушивают на воздухе и после полного высыхания фиксируют. При фиксировании мазок закрепляется на поверхности предметного стекла, и поэтому при последующей окраске препарата микробные клетки не смываются. Кроме того, убитые микробные клетки окрашиваются лучше, чем живые. Затем мазки окрашивают пометодике Грамма. После окраски препараты просматривают в световом микроскопе, используя иммерсионный объектив.

Результаты окраски: Грам (+) микроорганизмы окрашиваются основным красителем в темно-фиолетовый цвет, Грам (-), воспринимая дополнительную окраску, приобретают ярко-малиновый цвет.

2. Мазок на посев.

Классическое бактериологическое исследование отделяемого из влагалища позволяет оценить как качественный, так и количественный состав бактериальной микрофлоры.

В зависимости от цели исследования, которая определяется необходимостью проведения точной количественной оценки микрофлоры или возможностью ограничиться ориентировочным (полуколичественным) методом, вагинальное отделяемое высевают на питательные среды двумя методами:

- взятие вагинального отделяемого производят с помощью калиброванной петли (диаметр 3 мм) или ложечки Фолькмана. Затем материал погружают в 1 мл жидкой транспортной среды; из материала готовят серийные разведения из расчета 10:1 (объем/вес) и затем по 0,1 мл высевают на различные селективные питательные среды;

- взятие вагинального отделяемого производят микробиологическим тампоном и засевают на среду обогащения (тиогликолевая среда) и наполовину чашки Петри с селективной питательной средой с последующим рассевом (метод истощения).

Степень роста в первом случае определяют в пересчете на 1 мл вагинального отделяемого (КОЕ/мл). При полуколичественной оценке используют четыре уровня (градации) микробного обсеменения:

а. Со средой обогащения - рост только на жидкой среде, на плотной питательной среде рост отсутствует.

б. Скудный рост - на плотной питательной среде рост до 10 колоний микроорганизмов определенного вида.

в. Умеренный рост - на плотной питательной среде рост от 10 до 100 колоний микроорганизмов одного вида.

г. Обильный рост - на плотной питательной среде рост более 10 колоний микроорганизмов одного вида.

Для выделения всего спектра факультативно-анаэробных микроорганизмов и определения их количественных характеристик обычно используют агар с добавлением 5% донорской крови.

79. Перевязка чистой и гнойной раны

Чистые (асептические) раны - это раны, которые наносятся в операционной с полным соблюдением норм асептики. Такие раны заживают быстро, не склонны к осложнениям.

Техника перевязки чистой хирургической раны:

1) смазать края раны иодонатом или иодопироном;

2) обработать саму рану антисептиком (1-2% раствором перекиси водорода, 0,05% водным раствором хлоргексидина, 3% раствором борной кислоты);

3) наложить асептическую повязку.

Гнойные раны - являются инфицированными, в них уже развивается инфекционный процесс. Количество микроорганизмов в ране превышает 105 в 1 г ткани.

Техника перевязка гнойной раны:

1) Уложить больного на кушетку, операционный стол.

2) Снять пинцетом, придерживая сухим шариком кожу, поверхностные слои повязки, сбросить их в почкообразный лоток. Присохшую повязку отслоить шариком, смоченным в 3% растворе перекиси водорода.

3) После снятия поверхностных слоев повязки обильно смочить внутренний слой 3% раствором перекиси водорода. Промокшие салфетки осторожно снять пинцетом.

4) Обработать кожу вокруг раны шариком, смоченным в растворе антисептика (спиртовый раствор хлоргексидина) от края раны к периферии.

5) Взять другой стерильный пинцет.

6) Произвести туалет раны: пинцетом или стерильным шариком удалить гной, промыть рану раствором антисептика (3% перекись водорода, фурацилин), осушить стерильным шариком.

7) Пинцетом положить на рану стерильные салфетки с лечебным средством (левосин, левомеколь, диоксидиновая мазь) в зависимости от стадии течения раневого процесса.

8) Закрепить повязку с помощью бинта, клея или лейкопластыря.

80. Техника вскрытия различных форм парапроктитов

Парапроктит (параректальный абсцесс) -- острое или хроническое воспаление параректальной клетчатки.

Лечение острого парапроктита только хирургическое. Операция должна быть выполнена тотчас после установления диагноза, её относят к разряду неотложных. Вид обезболивания играет важную роль. Нужно полное обезболивание и хорошая релаксация. Чаще всего применяют внутривенный наркоз, перидуральную и сакральную анестезии, масочный наркоз. Местная анестезия при операциях по поводу острого парапроктита нецелесообразна из-за опасности распространения инфекции при инъекции анестетика, неадекватности обезболивания и усложнения ориентировки вследствие инфильтрации тканей анестезирующим раствором.

Основные задачи радикальной операции -- обязательное вскрытие и дренирование гнойника, иссечение поражённой крипты и рассечение гнойного хода. Точно определить поражённую крипту сложно, поэтому лучше прибегнуть к прокрашиванию хода и крипты. Для этого полость гнойника пунктируют толстой иглой, извлекают шприцем 2-3 мл гноя (для бактериологического исследования) и по этой же игле в полость вводят 1-2 мл 1% раствора метиленового синего с добавлением 3% раствора перекиси водорода (1:2). Краска из полости абсцесса по гнойному ходу проникает в просвет кишки и окрашивает крипту. После этого со стороны кожи промежности вскрывают гнойник. При ликвидации связи гнойника с кишкой можно рассчитывать на полное выздоровление пациента.

1. Лечение подкожного парапроктита.

При подкожном парапроктите его вскрывают радиальным разрезом, гнойную полость хорошо ревизуют пальцем, разделяют перемычки и ликвидируют гнойные затеки. Рана обязательно дренируется. В начале лечения используют повязки с водорастворимыми мазями, а в последующем -- с мазью Вишневского для активации образования грануляционной ткани и заживления раны из глубины к поверхности. При подкожных абсцессах с гнойным ходом, расположенным кнутри от наружного сфинктера, применяют операцию Габриэля. Отступив от края ануса не менее чем на 3 см, делают полулунный разрез кожи над абсцессом, после эвакуации гноя из раны в просвет кишки через поражённую крипту проводят желобоватый зонд и по нему рассекают гнойный ход. Кожу и слизистую оболочку иссекают в виде треугольника, вершина которого расположена в анальном канале, а основание -- кожный разрез. Тщательно иссекают слизистую оболочку с поражённой морганиевой криптой.

2. Лечение подслизистого парапроктита.

Гнойники при данном виде парапроктита вскрывают со стороны прямой кишки. При подслизистом парапроктите разрез можно произвести в радиальном направлении -- от гребешковой линии через пораженную анальную крипту (входные ворота инфекции) на перианальную кожу. Затем иссекают края разреза, пораженную крипту вместе с внутренним отверстием свища. На рану накладывают повязку с мазью, вводят газоотводную трубку в просвет прямой кишки.

3. Лечение седалищно-прямокишечного (ишиоректального) парапроктита.

Разрез должен быть полулунным на стороне поражения примерно на середине расстояния от заднепроходного отверстия до седалищного бугра, чтобы не повредить мышцы наружного жома. Тщательно обследуют полость его и вскрывают все гнойные затеки, рану промывают раствором перекиси водорода и рыхло тампонируют марлевым тампоном с диоксидиновой мазью.

4. Лечение тазово-прямокишечного (пельвиоректального) парапроктита.

Разрез должен быть полулунным на стороне поражения, чтобы не повредить мышцы наружного жома. Для того чтобы проникнуть в пельвиоректальное пространство, необходимо расслоить мышцу, поднимающую задний проход в продольном направлении (обычно с помощью корнцанга), а затем расширить отверстие пальцами и эвакуировать гной. Тщательно обследуют полость его и вскрывают все гнойные затеки, рану промывают раствором перекиси водорода и рыхло тампонируют марлевым тампоном с диоксидиновой мазью.

5. Лечение позадипрямокишечного (ретроректального) парапроктита.

Дренировать гнойник ретроректального (пресакрального) пространства можно двумя способами:

двумя полулунными разрезами позади заднего прохода справа и слева от средней линии, при этом заднепроходно-копчиковая связка сохранна;

полулунным широким разрезом длиной 5--6 см посередине между проекцией верхушки копчика и задним краем анального отверстия с пересечением заднепроходно-копчиковой связки, что обеспечивает широкий доступ в пресакральное пространство и хороший дренаж.

Эвакуируют гной, полость абсцесса обследуют пальцем, разъединяя перемычки. Экспонируют с помощью крючков заднюю стенку анального канала, окруженную мышцами сфинктера, где отыскивают участок свищевого хода, ведущий в просвет кишки.

Лигатурный метод лечения парапроктитов.

Данный метод хирургического лечения используют в той ситуации, когда гнойный ход расположен экстрасфинктерно или в толще мышцы наружного сфинктера и рассечение его в просвет кишки опасно из-за возможности развития недостаточности анального жома. Высокое расположение гнойного хода обычно бывает при ишиоректальном и пельвиоректальном парапроктите. Смысл применения лигатуры в том, что она при поэтапном затягивании постепенно рассекает гнойный ход в просвет кишки. Подобную операцию следует проводить только в специализированных колопроктологических отделениях.

Разрез на коже для опорожнения гнойника должен быть полулунным и широким (на стороне поражения). После эвакуации гноя и обнаружения хода, соединяющего полость гнойника с про-светом кишки в области одной из крипт, полулунный разрез кожи продлевают до средней линии: при заднем парапроктите -- кзади, а при переднем -- кпереди. Из просвета кишки делают окаймляющий разрез слизистой оболочки вокруг поражённой крипты, продлевают его вниз по всей длине анального канала до соединения с медиальным углом промежностной раны. Иссекают в виде узкой полоски выстилку анального канала и перианальную кожу. После выскабливания острой ложкой отверстия на месте удалённой крипты через него с помощью зажима или зонда проводят толстую нить (обычно двойной шёлк № 6). Один конец нити выводят из раны промежности строго по средней линии на 6 или 12 час по циферблату в зависимости от локализации поражённой крипты, второй её конец выходит через внутреннее отверстие в просвете кишки. Нить затягивают, через 2--3 дня часть волокон сфинктера прорезается лигатурой, и ее снова затягивают. Повторяя эту процедуру несколько раз, постепенно пересекают лигатурой мышечные волокна сфинктера, в результате чего у большинства больных удается ликвидировать свищ без нарушения замыкательной функции сфинктера.

В особую группу выделяют анаэробные (некротические) парапроктиты.

Это обусловлено обширностью и тяжестью поражения инфекционным процессом жировой клетчатки, мышц и фасций в области прямой кишки и промежности, что в свою очередь влияет на хирургическую тактику. Лечение анаэробных парапроктитов состоит в нанесении множественных широких разрезов, заходящих за границы поражения. Явно некротизированные ткани подлежат иссечению до появления кровоточивости краёв раны. Раневую поверхность обильно промывают перекисью водорода или крепким раствором марганцовокислого калия. Вводят тампоны с одним из этих растворов.

Перевязки в первые дни после операции делают не менее двух раз в сутки. Полезно установить постоянное капельное орошение раны перекисью водорода через дренаж, введенный под повязку. Показаны интенсивная инфузионная дезинтоксикационная терапия, барокамера, антибиотикотерапия. Кроме того, ежесуточно вводят по 80-100 тыс. ЕД противогангренозной сыворотки (при особенно тяжелом течении до 200 тыс. ЕД).

81. Определить предполагаемый срок родов у повторнобеременной:

82. Последняя менструация 12 марта; первое шевеление плода 16 июля; первая явка в ж/к 14 мая в сроке 8-9 недель беременности

Определение срока родов.

1. По менструации: первый день последней менструации + 7 дней - 3 месяца (правило Негеле). Либо к первому дню последней менструакции прибавить 280 дней (40 недель).

12 марта + 7 дней - 3 месяца = 19 декабря

2. По овуляции (день овуляции - середина цикла):

а) первый день последней менструации - 3 месяца + 14 дней

12 марта - 3 месяца + 14 дней = 26 декабря

б) первый день ожидавшейся (не наступившей) менструации - 14 дней + 273 дня.

в) дата зачатия (если известна) - 3 месяца - 7 дней, либо к известной дате зачатия прибавляют 266 дней (38 недель).

3. По первой явке в женскую консультацию - при ранней первой явке в женскую консультацию более точно, на основании симптомов беременности и увеличения матки, ставится срок беременности. К полученному сроку беременности добавляются недели, недостающие до 40 недель.

8-9 недель (от 14 мая) + 31-32 недель = 17-24 декабря

4. По УЗИ - при ультразвуковом исследовании по параметрам биометрии ставится срок беременности.

5. По первому шевелению плода - первое шевеление плода первобеременные женщины ощущают в 20 недель беременности, повторнобеременные в сроке 18 недель беременности. Для определения срока родов у первородящих к дате первого шевеления плода прибавляют 20 нед, у повторнородящих - к дате первого шевеления прибавляют 22 нед.

первое шевеление 16 июля + 22 недели (т.к. повторнобеременная) = 17 декабря

83. Пункция перикарда. Показания. Техника выполнения

Показания:

Эвакуация жидкости (экссудата, транссудата, крови) с лечебной и диагностической целью, Введение ЛС в полость перикарда.

Оснащение:

Игла или тонкий троакар длиной не менее 15 см, диаметром 1,2-1,5 мм, шприц ёмкостью 10-20 мл, иглы для проведения местной анестезии, раствор йода и спирта.

Техника:

За 20-30 мин до пункции больному подкожно вводят 1 мл 2% раствора промедола и 0,5 мл 0,1% раствора атропина. Последний применяют для ликвидации возможных побочных действий наркотиков.

Пункцию перикарда проводят натощак, под местной анестезией, в специальном помещении (в манипуляционной, процедурной, перевязочной, операционной). Больной находится в положении сидя или лёжа на кровати с приподнятым на 300 головным концом. Кожу предсердечной и эпигастральной области обрабатывают антисептическим раствором и отгораживают стерильным материалом.

Существуют два способа доступа к полости перикарда: через диафрагму и через грудную стенку около грудины. Чаще пользуются первым способом.

Пункция перикарда через диафрагму (метод Ларрея).

1. Точка пункции располагается слева в вершине угла, образованного хрящом X ребра (левая реберная дуга) и мечевидным отростком грудины, или у нижнего конца мечевидного отростка грудины.

2. Раствором новокаина производят местную анестезию кожи и подкожной клетчатки.

3. Пункционную иглу располагают перпендикулярно к поверхности тела и вводят на глубину 1,5 см. Затем её конец направляют круто вверх параллельно задней стенке грудины. Через 2-3 см ощущается прохождение (прокол) наружного листка перикарда. Отсутствие сопротивления дальнейшему прохождению иглы указывает на нахождение её в полости перикарда.

4. При потягивании поршня на себя в шприц начинает поступать содержимое полости перикарда (кровь, выпот или гной). Возникающее ритмичное сотрясение иглы указывает на соприкосновение конца иглы с сердцем. В подобной ситуации иглу можно слегка потянуть назад и прижать её конец к грудине, что достигается более сильным вдавливанием наружного конца иглы в сторону живота. Убедившись, что конец иглы находится в полости перикарда, удаляют имеющуюся жидкость.

Данный метод пункции перикарда сравнительно безопасен и крайне редко вызывает осложнения. Иногда возникает опасность повреждения желудка, в связи с чем пункцию рекомендуется проводить натощак.

Пункция перикарда через грудную стенку около грудины (метод Марфана).

К данной методике прибегают при затруднениях в пункции перикарда через диафрагму, при воронкообразной деформации грудной клетки, значительном увеличении печени, а также в случае необходимости локальной пункции при осумкованном перикардите.

Точки пункции располагаются около края грудины, слева в IV-VI или справа в IV-V межреберьях. В этом случае после перпендикулярного к поверхности кожи прохождения иглой межреберного промежутка (1,5-2 см) её наружный конец максимально наклоняют латерально и проводят иглу позади грудины на глубину 1-2 см, во избежание прокола плевры. Другая точка пункции располагается на 2 см медиальнее левой границы абсолютной сердечной тупости. В этом случае иглу проводят косо вверх и медиально в направлении позвоночника через плевру.

Недостатками метода пункции перикарда через грудную стенку около грудины являются трудность полной эвакуации жидкости, невозможность применения метода при гнойном перикардите ввиду опасности инфицирования плевральной полости, возможность выхода иглы из полости перикарда по мере удаления жидкости.

Осложнения:

Повреждение плевры и края лёгкого, что может провоцировать развитие пневмоторакса, плеврита, пневмонии; при глубоком продвижении иглы существует опасность ранения внутренних грудных артерий, повреждения миокарда, прокола камер сердца. Чтобы избежать осложнений не следует допускать суетливых, резких движений; продвигать иглу нужно мягким усилием, без рывков.

84. Оказание помощи при гипогликемической коме

Гипогликемическая кома - состояние, обусловленное падением концентрации глюкозы в крови ниже минимального уровня, к которому адаптирован организм: < 3,3 ммоль/л в плазме и < 2,8 ммоль/л в цельной крови натощак.

Лечение на догоспитальном этапе:

1. Немедленное в/в струйное введение 60-80 мл 40% раствора глюкозы. Если сознание к больному возвращается, делают сладкий чай и кормят с короткими интервалами.

2. При отсутствии эффекта - повторное введение еще 40-50 мл 40% раствора глюкозы в/в. Транспортировка в больницу.

Лечение на госпитальном этапе:

1. 5% раствор глюкозы в/в капельно по 400-500 мл/час до повышения глюкозы крови (11 ммоль/л) и появления сахара в моче.

2. Глюкагон 1 мл п/к, в/м, в/в

3. При отсутствии эффекта 1 мл 0,1% раствора адреналина п/к.

4. Гидрокортизон 150-300 мг + кокарбоксилазы 100 мг + 5% раствор аскорбиновой кислоты 5 мл в 300-500 мл 5% раствора глюкозы в/в капельно.

5. При отсутствии сознания у больного после устранения гипогликемии, продолжить в/в капельное введение глюкозы, в/м введение 1-2 мл глюкагона каждые 2 часа, 75 мг гидро-кортизона (или 30 мг преднизолона) в/в капельно 4 раза/сутки, 5-10 мг 25% раствора сульфата магния в/в.

6. 15-20% раствор маннитола из расчета 0,5-1 г/кг массы тела в/в капельно для профилактики отека мозга.

7. Коррекция гипогликемии, коллапса, нарушений гемостаза - по общим правилам. ЭКГ и энцефалография обязательны.

Примечание.

При алкогольной гипогликемии смертность без лечения достигает около 25% у детей и 10% у взрослых.

Лечение глюкагоном обычно неэффективно, поскольку запасы гликогена уже истощены. Не требуется длительная инфузионная терапия. Рецидив гипогликемии предотвращают приемом умеренного количества углеводов.

Развитие гипогликемии при печеночной недостаточности - плохой прогностический признак, свидетельствующий об обширном поражении печени.



85. Оценка состояния клапанов магистральных вен нижних конечностей с помощью функциональных проб

Функциональные пробы на состоятельность клапанов большой подкожной вены.

1. Проба Броди-Троянова-Тренделенбурга:

- больной укладывается на спину. Приподнимается кверху исследуемая нижняя конечность больного;

- поглаживанием в проксимальном направлении голени и бедра добиваются спадения вен;

- накладывается жгут на верхнюю треть бедра, вместо жгута можно применить пальцевое сдавление области впадения большой подкожной вены в бедренную;

- больной становится на ноги, в этом положении снимается жгут. Если подкожные вены быстро сверху вниз заполняются кровью, то это указывает на недостаточность венозных клапанов большой подкожной вены.

2. Проба Шварца:

Удобно проводить с тучными больными, у которых большая подкожная вена бедра плохо просматривается. Пациент становится на стул или на кушетку. Врач прикладывает кончики пальцев левой руки с внутренней стороны от пульсирующей в паху бедренной артерии, а кончиками пальцев правой руки постукивает по расширенным варикозным узлам на голени. Удар передается с волной крови кверху и ощущается пальцами в паховой области. Меняя положение пальцев левой руки и постепенно опускаясь к голени, можно определить ход боль-шой подкожной вены. При недостаточности ее клапанов в промежутках между постукиваниями чувствуется обратная волна крови, направленная сверху вниз.

Пробы на проходимость и функциональное состояние глубоких вен.

1. Маршевая проба Дельбе-Пертеса:

- больной укладывается на спину, приподнимается кверху исследуемая нижняя конечность;

- поглаживанием в проксимальном направлении голени и бедра добиваются спадения вен;

- накладывается жгут на верхнюю треть бедра, удерживая жгут рукой, больной встаёт;

- больной начинает ходить или марширует 3-5 минут. Если подкожные вены быстро опорожняются, то проба положительна - глубокие вены достаточно проходимы и функционально полноценны. Если после ходьбы 5-10 минут вены не спадаются, а наоборот увеличивается напряжение стенок и узлов, возникает боль в икроножных мышцах, то проба считается отрицательной и свидетельствует о непроходимости глубоких вен. Результаты пробы так же могут быть сомнительными при частичной проходимости глубоких вен. В подобных случаях необходима флебография.

2. Двухбинтовая проба Пратта-1:

- В горизонтальном положении приподнимается исследуемая конечность для опорожнения от венозной крови.

- Производится эластическое бинтование от пальцев стопы до паха.

- Больной встаёт и ходит в течении 20-30 минут. Отсутствие неприятных субъективных ощущений свидетельствует о хорошем состоянии глубоких вен и наоборот.

Пробы для выявление функциональной несостоятельности коммуникантных вен.

1. Трехжгутовая проба Берроу-Шейниса:

- В горизонтальном положении приподнимается исследуемая конечность для опорожнения подкожных вен.

- Накладывается три резиновых жгута: в верхней трети бедра, над коленным суставом и ниже его. Больной встает.

- Быстрое заполнение вен кровью говорит о наличии в этом месте коммуникантных вен с недостаточными клапанами.

2. Двухбинтовая проба Пратта-2.

- В положении лежа приподнимается исследуемая конечность для опорожнения подкожных вен.

- Производится эластическое бинтование от пальцев стопы до паха. В верхней трети бедра на-кладывается резиновый жгут. Больной встает.

- Вторым эластическим бинтом производится бинтование конечности в обратном направлении - сверху вниз, предварительно постепенно сбинтовывают, оставляя между бинтами окно примерно с ладонь величиной. Быстрое заполнение между бинтами варикозной вены кровью свидетельствует о наличии в этом месте коммуникантной вены с недостаточными клапанами.

86. Техника выполнения проб, сопряженных с переливанием крови

1. Проба на индивидуальную совместимость по системе АВ0.

Оснащение: кровь донора, сыворотка реципиента, чашка Петри, физиологический раствор хлорида натрия, пипетка, стеклянная палочка.

Последовательность действий:

1) Из вены реципиента взять 3-5 мл крови, центрифугировать для получения сыворотки.

2) На чашку Петри нанести крупную каплю (0,1 мл) сыворотки реципиента.

3) Рядом нанести малую каплю (0,01 мл) крови донора из флакона, перемешать стеклянной палочкой.

4) Чашку Петри периодически покачивать.

5) Результаты оцениваем через 5 минут. Если произошла агглютинация, добавить каплю физиологического раствора хлорида натрия (проверка на ложную агглютинацию).

Трактовка результатов:

Отсутствие агглютинации эритроцитов донора свидетельствует о совместимости крови донора и реципиента по системе АВ0, наличие её - о несовместимости.

2. Проба на индивидуальную совместимость по резус-фактору проводится по трем вариантам:

а) Проба с использованием водной бани.

Техника проведения пробы аналогична пробе на индивидуальную совместимость по системе АВ0, только после смешивания крови с плазмой чашка Петри помещается на водяную баню при температуре 42-45°С. Оценка результатов производится через 5-10 мин. Если происходит агглютинация, то кровь несовместима в отношении резус-фактора.

б) Проба с использованием 33% раствора полиглюкина:

Оснащение: кровь донора, сыворотка реципиента, 33% раствор полиглюкина, центрифужная пробирка, физиологический раствор натрия хлорида, пипетки.

Последовательность действий:

- Из вены реципиента взять 3-5 мл крови, центрифугировать.

- На дно центрифужной пробирки разными пипетками нанести 2 капли сыворотки больного, 1 каплю донорской крови и 1 каплю 33% раствора полиглюкина.

- Содержимое перемешать, наклонив пробирку почти до горизонтального положения и медленно вращать вокруг оси, распределив содержимое по стенкам ровным слоем.

- Процедуру продолжать в течение 5 минут.

- Через 5 минут добавить 3-4 мл физиологического раствора хлорида натрия.

- Содержимое перемешивать, 2-3 раза наклоняя пробирку до горизонтальной плоскости (не взбалтывать!).

Трактовка результатов:

Отсутствие агглютинации, равномерное окрашивание содержимого пробирки свидетельствуют о резус-совместимости крови донора и реципиента; наличие агглютинации - о несовместимости крови донора и реципиента по резус-фактору.

в) Проба с использованием 10% желатина:

- на дно пробирки помещают 1 каплю эритроцитов донора, отмытых десятикратным объемом физраствора;

- добавляют 2 капли сыворотки реципиента и 2 капли подогретого до разжижения 10% раствора желатина;

- перемешивают и греют на водяной бане при 46-48°С 10 мин.

- добавляют 6-8 мл физраствора, перемешивают, не взбалтывая.

Наличие агглютинации свидетельствует о несовместимости крови донора и реципиента.

3. Проведение биологической пробы на совместимость при гемотрансфузии.

Выполняют у постели больного после подключения системы для трансфузии.

Последовательность действий:

- первые 15-20 мл крови вводить струйно.

- систему перекрыть.

- наблюдать за состоянием больного в течение 3 минут.

- при отсутствии клинических проявлений реакции или осложнения повторить еще дважды.

Отсутствие реакций после трехкратной проверки у больного служит признаком совместимости вливаемой крови и является основанием для осуществления всей гемотрансфузии. При несовместимости крови донора и реципиента поведение больного становится беспокойным: появляется тахикардия, одышка, гиперемия лица, ощущение озноба или жара, стеснение в груди, боли в животе и поясничной области.



87. Отсасывание содержимого из верхних дыхательных путей (с использованием электро- и механического отсосов)

Алгоритм выполнения навыка:

1. При скоплении в дыхательных путях мокроты и нарушении процессов откашливания больного укладывают горизонтально и периодически 3-4 раза в сутки на 40-60 минут придают постуральное положение с поднятием ножного конца кровати. При этом мокрота будет стекать из нижних отделов бронхов в трахею.

2. Удалению мокроты способствуют также вибрационный массаж грудной клетки и «вспомогательный» кашель, проводимые несколько раз в сутки.

3. При малой эффективности этих действий выполняют принудительную санацию трахеобронхиального дерева с помощью катетера, введенного в ротоглотку через рот или носовые ходы. Раздражение глубоких отделов глотки вызывает кашлевой рефлекс, а поступающая из трахеи мокрота аспирируется катетером.

4. Аспирация содержимого из верхних дыхательных путей производится с помощью электроотсосов, реже используются механические отсосы. Перед их использованием необходимо проверить их работу, герметичность системы банок и трубок, подсоединенных к отсосу.

5. Наиболее действенным методом лечения острой дыхательной недостаточности, вызванной обтурацией бронхов мокротой, является бронхоскопическая санация, которая проводится в условиях реанимационного отделения.

Техника отсасывания содержимого через назотрахеальную трубку.

Желательно использовать мягкую резиновую трубку с изогнутым рабочим концом. Если больной получает кислород, ингаляцию не прекращают, поручив контроль за ней ассистенту. Больного усаживают и через нос в ротоглотку вводят хорошо смазанную трубку. Запрокидывают голову и осторожно вытягивают язык вперед, чтобы поднять надгортанник. Если приложить к уху свободный конец трубки, можно услышать дыхательные шумы и по ним определить уровень голосовой щели. Дождавшись вдоха, быстро продвигают трубку вниз. О попадании в трахею свидетельствует кашель и исчезновение голоса. Перед тем как включить отсос, рекомендуют врачу задержать дыхание. Отсасывание не должно длиться дольше, чем врачу удается без затруднений сдерживать собственное дыхание. Слишком долгое отсасывание -- одна из самых частых причин тяжелой гипоксии в отделениях реанимации.

88. Оказание врачебной помощи при клапанном пневмотораксе

Клапанный пневмоторакс является разновидностью открытого. Он отличается тем, что воздух поступает в плевральную полость через узкое отверстие в ткани легкого (или раны грудной клетки) при каждом вдохе, а при выдохе не полностью выходит наружу из-за перекрытия отверстия в плевре окружающими тканями, образующими подобие клапана. В некоторых случаях клапанного пневмоторакса воздух через "клапан" накачивается только в одном направлении, в плевральную полость. Давление (напряжение) в плевральной полости быстро нарастает. Такой вид клапанного пневмоторакса называют напряженным.

Показания:

угроза жизни при клапанном (напряжённом) пневмотораксе в связи резким смещением органов средостения.

Алгоритм манипуляции:

1) Оказание срочной первой помощи на догоспитальном этапе (дома или в машине скорой помощи) - перевод напряжённого пневмоторакса в открытый, для этого

- обработать кожу грудной клетки дважды спиртом

- в нескольких местах в межреберья ввести инъекционные иглы (диаметром как для внутривенного введения)

- накрыть их одним слоем стерильных марлевых салфеток

- далее срочно транспортировать больного в хирургический стационар

2) В хирургическом стационаре - срочно провести дренирование плевральной полости

- Место пункции -- II-III межреберье по среднеключичной линии.

- Положение больного -- лёжа на спине.

- Анестезию кожи проводят по верхнему краю нижележащего ребра.

- Для указанной пункции предварительно готовят одноразовую систему для внутривенных вливаний. В системе отрезают трубку сразу после капельницы и опускают конец трубки в стерильный флакон с физиологическим раствором.

- Иглой, надетой на шприц, проводят пункцию плевральной полости

- После прокола плевры в шприц начинает поступать воздух. Шприц снимают, а иглу тотчас же соединяют с канюлей подготовленной системы. Воздух начинает выделяться через слой жидкости во флаконе.

- После прекращения тока воздуха иглу отсоединяют от системы и вновь соединяют со шприцем. Поршень шприца оттягивают на себя, набирая в него воздух, и быстро извлекают иглу из плевральной полости.

- Воздух отсасывают до получения отрицательного давления в плевральной полости.

- После проведения плевральной пункции и удаления воздуха необходимо выполнить контрольную рентгенографию органов грудной клетки.

Интерпретация результатов:

значительное уменьшение признаков дыхательной недостаточности свиде-тельствует о правильном выполнении манипуляций.

Возможные осложнения:

Прокол паренхимы лёгкого, Повреждение межрёберного сосудисто-нервного пучка.

89. Взятие крови для лабораторных исследований при соматической и инфекционной патологии у пациента

При исследовании крови необходимо помнить, что все процессы жизнедеятельности под-вержены значительным вариациям под влиянием внешних факторов, таких как смена времени суток и года, приём пищи, изменение солнечной активности. Биохимический состав биологических жидкостей подвержен индивидуальным колебаниям у различных людей, отражая влияние пола, возраста, характера питания, образа жизни. Морфологический состав крови также колеблется на протяжении суток. Поэтому осуществлять забор крови целесообразно в одно и то же время - утром натощак.

Медицинская сестра накануне исследования должна предупредить больного о предстоящем заборе крови и разъяснить, что кровь берут натощак, до приёма лекарственных средств, а на ужин не следует употреблять жирную пищу.

При заборе крови из вены время наложения жгута должно быть по возможности минимальным, так как длительный стаз крови повышает содержание общего белка и его фракций, кальция, калия и других компонентов.

В зависимости от цели исследования забор крови для лабораторного анализа осуществляют из пальца (капиллярная кровь) и из вены (венозная кровь).

1. Кровь из пальца берёт лаборант; этот анализ необходим для количественного и качественного изучения форменных элементов крови (эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов), определения количества в крови гемоглобина и скорости оседания эритроцитов (СОЭ). Такой анализ называют общим анализом крови или общеклиническим исследованием крови. Кроме того, в ряде случаев из пальца берут кровь для определения содержания в крови глюкозы, а также свёртываемости крови и времени кровотечения.

В настоящее время созданы аппараты (например, «Холестех»), в которых на основе восковой матрицы осуществляется возможность из капли крови, взятой из пальца, определять содержание в крови общего холестерина, холестерина липопротеидов высокой, низкой и очень низкой плотности, триглицеридов и глюкозы, рассчитывать индекс атерогенности и риск развития ИБС.

Техника взятия крови из пальца:

1) Исследование крови всегда следует производить в одно и то же время при одинаковых условиях, до приема пищи. Кровь берут из IV пальца левой руки.

2) Перед уколом палец дезинфицируют и обезжиривают, протирая его ватой, смоченной спиртом, а затем эфиром или смесью.

3) Прокол производят либо стерилизованным скарификатором, либо иглой Франка со сменными стерилизуемыми лезвиями. Укол обычно производиться в верхушку мякоти первой фаланги на глубину 2,5-3 мм. Полученную после укола первую каплю снимают фильтровальной бумагой или ватой, смоченной эфиром.

4) Кровь для исследования берут в определенном порядке; для определения СОЭ, гемоглобина, затем для подсчета лейкоцитов и эритроцитов, при необходимости делают мазки.

5) После взятия крови, мякоть пальца заворачивается смоченной эфиром или спиртом ватой и прижимается к ладони для того, чтобы остановить кровотечение.

2. Кровь из вены берёт процедурная медицинская сестра посредством пункции в большинстве случаев локтевой вены; кровь смешивается в пробирке с противосвёртывающим веществом (гепарин, натрия цитрат и пр.). Забор крови из вены осуществляют с целью количественного изучения биохимических показателей крови (так называемых печёночных проб, ревматологи-ческих проб, содержания глюкозы, фибриногена, мочевины, креатинина и пр.), обнаружения возбудителей инфекции (взятие крови на гемокультуру и определение чувствительности к антибиотикам) и антител к ВИЧ. Вид требуемого биологического материала зависит от цели исследования: цельную кровь с антикоагулянтом применяют для исследования равномерно распределённых между эритроцитами и плазмой веществ (мочевины, глюкозы и др.), сыворотку или плазму - для неравномерно распределённых (натрия, калия, билирубина, фосфатов и др.). Объём забираемой из вены крови зависит от количества определяемых компонентов - обычно из расчёта 1-2 мл на каждый вид анализа.

Техника взятия крови из вены у соматического больного:

Противопоказания к процедуре определяет врач. К ним относят крайне тяжёлое состояние пациента, спавшиеся вены, судороги, возбуждённое состояние пациента.

Весь использованный во время манипуляции материал необходимо продезинфицировать. Резиновый жгут и клеёнчатый валик протирают дважды ветошью, смоченной дезинфицирующим раствором (например, 3% раствором хлорамина Б), и промывают проточной водой. Использованный ватный шарик с кровью обязательно следует забрать у пациента и, прежде чем поместить его в отходы, замочить в дезинфицирующем растворе не менее чем на 60 мин. Дезинфицирующим раствором необходимо обработать также и рабочий стол.

Необходимое оснащение: одноразовые (стерильные) шприцы с иглами; стерильный лоток с ватными шариками и пинцетом; резиновый жгут, резиновый валик и салфетка; 70% раствор спирта, чистые пробирки с пробочками в штативе; спецодежда (халат, маска, стерильные перчатки); лоток для использованного материала; тонометр, фонендоскоп, противошоковый набор лекарственных средств.

Порядок выполнения процедуры:

1) Подготовить пациента - помочь ему занять удобное положение сидя или лёжа (в зависимости от тяжести его состояния).

2) Подготовиться к процедуре: пронумеровать пробирку и направление на анализ (одинаковым порядковым номером), вымыть и высушить руки, надеть спецодежду, обработать руки ватными шариками, смоченными 70% раствором спирта, надеть перчатки.

3) Подложить под локоть пациента клеёнчатый валик для максимального разгибания локтевого сустава.

4) Освободить от одежды руку или поднять рукав рубашки до средней трети плеча таким образом, чтобы был обеспечен свободный доступ к области локтевого сгиба.

5) Наложить резиновый жгут в области средней трети плеча выше локтевого сгиба на 10 см (на салфетку или расправленный рукав рубашки, но таким образом, чтобы он не ущемил кожу при завязывании) и затянуть жгут, чтобы петля жгута была направлена вниз, а свободные его концы - вверх (чтобы концы жгута во время венепункции не попали на обработанное спиртом поле).

6) Обработать одетые в перчатки руки 70% раствором спирта.

7) Предложить пациенту «поработать кулаком» - несколько раз сжать и разжать кулак для хорошего наполнения вены.

8) Попросить пациента сжать кулак и не разжимать до тех пор, пока медсестра не разрешит; при этом дважды обработать кожу в области локтевого сгиба ватными шариками, смоченными 70% раствором спирта, в одном направлении - сверху вниз, сначала широко (размер инъекционного поля составляет 4x8 см), затем - непосредственно место пункции.

9) Найти наиболее наполненную вену; затем кончиками пальцев левой руки оттянуть кожу локтевого сгиба в сторону предплечья и фиксировать вену.

10) В правую руку взять приготовленный для пункции шприц с иглой.

11) Провести венепункцию: держа иглу срезом вверх под углом 45°, ввести иглу под кожу; затем, уменьшив угол наклона и держа иглу почти параллельно кожной поверхности, продвинуть иглу немного вдоль вены и ввести её на треть её длины в вену (при соответствующем навыке можно одномоментно проколоть кожу над веной и стенку самой вены); при проколе вены возникает ощущение «провала» иглы в пустоту.

12) Убедиться, что игла находится в вене, слегка потянув поршень иглы на себя; при этом в шприце должна появиться кровь.

13) Не снимая жгут, продолжить тянуть поршень шприца на себя для набора необходимого количества крови.

14) Развязать жгут и предложить больному разжать кулак.

15) Прижать ватный шарик, смоченный в 70% растворе спирта, к месту инъекции и быстро извлечь иглу. В ряде случаев во избежание повреждения форменных элементов крови (например, при исследовании агрегационной функции тромбоцитов) кровь нельзя набирать шприцем. В такой ситуации следует набирать кровь «самотёком» - подставить под иглу (без шприца) пробирку и подождать, пока она заполнится необходимым количеством крови.

16) Предложить больному согнуть руку в локтевом сгибе вместе с ватным шариком и оставить так на 3-5 мин для остановки кровотечения.

17) Снять иглу со шприца (так как при выпуске крови из шприца через иглу могут быть повреждены эритроциты, что вызовет их гемолиз), медленно выпустить кровь в пробирку по её стенке (быстрое поступление крови в пробирку может привести к её вспениванию и, следовательно, гемолизу крови в пробирке) и закрыть пробирку пробочкой.

18) Сложить использованные материалы в специально приготовленный лоток, снять перчатки.

19) Спросить у пациента о его самочувствии, помочь ему встать или удобно лечь (в зависимости от тяжести его состояния).

20) Оформить направление в лабораторию, поместить штатив с пробирками в ёмкость для транспортировки биологических жидкостей (бикс) и отправить в лабораторию для исследования. При подозрении на гепатит или ВИЧ-инфекцию у больного ёмкость с кровью необходимо дополнительно парафинировать или закрыть лейкопластырем и поместить в герметичный контейнер.

3. Взятие крови из вены на гемокультуру (стерильность) и чувствительность к антибиотикам у инфекционного больного.

Необходимое оснащение: стерильные флаконы со средами, полученные в бактериологической лаборатории к моменту забора крови; спиртовка, спички; одноразовые (стерильные) шприцы с иглами; стерильный лоток с ватными шариками и пинцетом; резиновый жгут, резиновый валик и салфетка; 70% раствор спирта, чистые пробирки с пробочками в штативе (или флаконы); спецодежда (халат, маска, стерильные перчатки); лоток для использованного материала; тонометр, фонендоскоп, противошоковый набор лекарств.

Порядок выполнения процедуры:

1) Подготовить пациента - помочь ему занять удобное положение сидя или лёжа (в зависимости от тяжести его состояния).

2) Подготовиться к процедуре: пронумеровать пробирку (флакон) и направление на анализ (одинаковым порядковым номером), вымыть и высушить руки, надеть спецодежду, обработать руки ватными шариками, смоченными 70% раствором спирта, надеть перчатки, зажечь спиртовку.

3) Подложить под локоть пациента клеёнчатый валик для максимального разгибания локтевого сустава.

4) Освободить от одежды руку или поднять рукав рубашки до средней трети плеча таким образом, чтобы был обеспечен свободный доступ к области локтевого сгиба.

5) Наложить резиновый жгут в области средней трети плеча выше локтевого сгиба на 10 см (на салфетку или расправленный рукав рубашки таким образом, чтобы жгут не ущемил кожу при завязывании) и затянуть жгут, чтобы петля жгута была направлена вниз, а свободные его концы - вверх (чтобы концы жгута во время венепункции не попали на обработанное спиртом поле).

6) Обработать одетые в перчатки руки 70% раствором спирта.

7) Предложить пациенту «поработать кулаком» - несколько раз сжать и разжать кулак для хорошего наполнения вены.

8) Предложить пациенту сжать кулак и не разжимать до тех пор, пока медсестра не разрешит; при этом дважды обработать кожу в области локтевого сгиба ватными шариками, смоченными 70% раствором спирта, в одном направлении - сверху вниз, сначала широко (размер инъекци-онного поля 4x8 см), затем - непосредственно место пункции.

9) Найти наиболее наполненную вену; затем кончиками пальцев левой руки оттянуть кожу локтевого сгиба в сторону предплечья и фиксировать вену.

10) В правую руку взять приготовленный для пункции шприц с иглой.

11) Провести венепункцию: держа иглу параллельно коже срезом вверх под углом 45°, од-номоментно проколоть кожу над веной и стенку самой вены или провести прокол в два этапа - сначала проколоть кожу, затем иглу подвести к стенке вены и сделать её прокол.

...